ประสิทธิภาพของเชื้อเห็ดตับเต่า (Boletus sp.) ในการควบคุมไส้เดือนฝอยรากปม (Meloidogyne incognita)

ผู้แต่ง

  • Athithan Chompen นักศึกษา หลักสูตรวิทยาศาสตรมหาบัณฑิต สาขาวิชาโรคพืช คณะเกษตร กำแพงแสน มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์
  • Amornsri Khun-in อาจารย์ ภาควิชาโรคพืช คณะเกษตร กำแพงแสน มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์

คำสำคัญ:

การควบคุมโดยชีววิธี, ไส้เดือนฝอยรากปม, เห็ดตับเต่า

บทคัดย่อ

จากการทดสอบประสิทธิภาพของเชื้อเห็ดตับเต่า (Boletus sp.) ต่อการควบคุมไส้เดือนฝอยรากปม (Meloidogyne incognita) ที่สุ่มเก็บตัวอย่างจากป่าโสน จังหวัดพระนครศรีอยุธยา ตั้งแต่เดือนกันยายน 2560-2562 สามารถแยกเชื้อเห็ดตับเต่าจากส่วนของก้านดอก ได้เชื้อบริสุทธิ์ 15 ไอโซเลท คือ TA1, TA 2, TA 3, TA 4, TA5, TA6, TA7, TA8, TA9, TA10, TA11, TA12, TA13, TA14 และAK15 เมื่อนำมาทดสอบประสิทธิภาพต่อการเข้าทำลายกลุ่มไข่ของไส้เดือนฝอยรากปม พบ 5 ไอโซเลทที่มีประสิทธิภาพการควบคุมสูงกว่าเมื่อเปรียบเทียบกับชุด Control อย่างมีนัยสำคัญ คือ ไอโซเลท TA6 , TA 9 , TA 11 , TA 13 และ AK มีเปอร์เซ็นต์การเข้าทำลายที่ 100%

เอกสารอ้างอิง

Shahbaz MU, Mukhtar T, Haque MI, Begum N. Biochemical and serological characterization of Ralstonia olanacearum associated with chilli seeds from Pakistan. Int J Agric Biol. 2015; 17(1): 31-40.

Aslam MN, Mukhtar T, Ashfaq M, Hussain MA. Evaluation of chili germplasm for resistance to bacterial wilt caused by Ralstonia solanacearum. Australas Plant Pathol. 2017; 46(3): 289-292.

Aslam MN, Mukhtar T, Hussain MA, Raheel M. Assessment of resistance to bacterial wilt incited by Ralstonia solanacearum in tomato germplasm. J Plant Dis Prot. 2017; 124(6): 585-590.

Fateh FS, Mukhtar T, Kazmi MR, Abbassi NA, Arif AM. Prevalence of citrus decline in district Sargodha. Pak J Agric Sci. 2017; 54(1): 9-13.

Trudgill DL, Blok VC. Apomictic, polyphagous root-knot nematodes: exceptionally successful and damaging biotrophic root pathogens. Annu Rev Phytopatholo. 2001; 39: 53-77.

Ismail AE. Growing Jatropha Curcas and Jatropha Gossypiifolia as a Interculture with Sunflower for Control of Meloidogyne Javanica in Egypt. International Journal of Sustainable Agricultural Research. 2014; 1(2): 39-44.

Cook RJ, Baker KF. The Nature and Practice of Biological of Pathogens. The American Phytopathological Society St. Minnesota; 1983.

Jalata P. Biological control of nematode, Sasser JN, Carter CC, editor. An advanced treatise on Meloidogyne Volume II: Methodology. USA. Dept Plant Pathol. North Carolina State Univ. 1985; p. 303-304.

Khun-in A. The Influence of Some Mushrooms on Root-knot Nematode Meloidogyne incognita [MSc thesis]. Nakhon Pathom: Kasetsart University; 2005. Thai.

Saeng-ngoen K, Yutim B. Effect of Concentrated Liquid Bolete Mushroom (Boletus colossus Heim.) on Growth and Yield of Hybrid Chilli (Capsicum annuum var. Super Hot). Songklanakarin J Pl Sci. 2018; 5(3): 1-8. Thai.

Verasathiean S, Tangkijchote P, Wanichkul K. Nutrients Affecting Seedling Growth of Eucalyptus after King Bolete Spawn Inoculation. Agricultural Sci J. 2010; 41 Suppl 3/1: S201-204. Thai.

Khun-in A, Sukhakul S, Chamswarng C, Tangkijchote P, Sasnarukkit A. Culture filtrate of Pleurotus ostreatus isolate Poa3 effect on egg mass hatching and juvenile 2 of Meloidogyne incognita and its potential for biological control. J ISSAAS. 2015; 21(1): 46-54.

Heydari R, Pourjam E, Mohammadi Goltapeh E. Antagonistic effect of some species of Pleurotus on the root-knot nematode, Meloidogyne javanica in vitro. J Plant Pathol. 2006; 5(2): 173-177.

Rajchawong N. Efficacy of the Filtrate from King Bolete Mushroom Mycelia (Boletus colossus Heim.) for Controlling Root-Knot Nematode (Meloidogyne incognita) of Chili [B.S. thesis]. Nakhon Pathom: Kasetsart University; 2010. Thai.

Alves MJ, Ferreira IC, Froufe HJ, Abreu RM, Martins A, Pintado M. Antimicrobial activity of phenolic compounds identified in wild mushrooms SAR analysis and docking studies. J Appl Microbiol. 2013; 1-12.

Kim MY, Seguin P, Ahn JK, Kim JJ, Chun SC, Kim EH. Phenolic Compound Concentration and Antioxidant Activities of Edible and Medicinal Mushrooms from Korea. J Agric food chem. 2008; 56: 7265-7270.

Vaquero MJR, Alberto MR, Manca de Nadra MC. Antibacterial effect of phenolic compounds from different wines. Food Control. 2007; 18: 93-101.

Tiwari PK, Kumar M, Kaur H. Phytochemical screening and Extraction: A Review. IPS. 2011; 1: 98-106.

Warcup JH. Ectomycorrhizal Associations of Australian Indigennous Plants. New Phytologist. 1980; 85: 531-535.

Ackerson JP. Soil Sampling Guidelines. Ag purdue edu Agry. 2018.

Biodiversity-based Economy Development Office. Mushroom biological property list. Biodiversity Digital Library. 2013. 376 p. Thai.

McClure MA, Kruk TH, Misaghi I. A method for obtaining quantities of clean Meloidogyne eggs. J Nematol. 1973; 5(3): 230.

Gortari MC, Hours RA. Fungal chitinases and their biological role in the antagonism onto nematode eggs. A Rev Mycol Progress. 2008; 7(4): 221-238.

Sun MH, Gao L, Shi YX, Li BJ, Liu XZ. Fungi and actinomycetes associated with Meloidogyne spp. eggs and females in China and their biocontrol potential. Invertebr Pathol J. 2006; 93(1): 22-28.

Barron GL, Thorn RG. Destruction of nematodes by species of Pleurotus. Can J Bot. 1987; 65(4): 774-778.

Contina JB, Danduran LM, Knudsen GR. Use of GFP-tagged Trichoderma harzianum as a tool to study the biological control of the potato cyst nematode Globodera pallida. Appl Soil Ecol. 2017; 115: 31-37.

Zhang S, Gan Y, Ji W, Xu B, Hou B, Liu J. Mechanisms and characterization of Trichoderma longibrachiatum T6 in suppressing nematode (Heterodera avenae) in wheat. Front Plant Sci. 2017. 15(8) 1491.

Barron GL. Pleurotus toxin[Internet]. 2003. Barron Website. Available from http://www.uoguelph.ca/ ~gbarron/Zbiodiversity/pleutox.htm

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2021-05-17

ฉบับ

ประเภทบทความ

บทความวิจัย