Natural Propagation and Micropropagation of Tupistra albiflora K. Larsen
Article Sidebar
Main Article Content
Abstract
The purpose of this research was to study a potential method for the proliferation of Tupistra albiflora K. Larsen. The natural propagation of seeds and in vitro propagation were examined. The methodological process was based on participatory action research (PAR) between researchers and folks in Thepsadej communities, Doisaket district in Chiang Mai province. The results showed that the natural germination of seeds was increased when the seeds were soaked with warm-water overnight before transplanting, which the germination rate was 84% within 8 weeks. While the result of in vitro propagation with mature seeds and embryos on MS ager medium demonstrated that the germination of the embryo culture was higher than those found in the in vitro mature seed culture. The embryo culture from young fruits gave the highest germination of 100%. In addition, the influence of BA on in vitro embryo culture of T. albiflora was also studied. The embryos were cultured on MS ager medium supplemented with 0, 0.5, 1.0, 2.0, 3.0 and 4.0 mg/l BA for 8 weeks. This research revealed that the MS agar medium containing 0.5 mg/l BA induced 100% of shoot and root formations with the highest number of 4.0 shoots per explant and the number of 2.0 roots per explant.
Article Details
References
L.V. Averyanov, N. Tanaka, K.S. Nguyen, B.V. Truong, D.T. Nghiem, T.H. Nguyen. New species of Ophiopogon, Peliosanthes and Tupistra (Asparagaceae s.l.) in the flora of Vietnam. Nord. J. Bot. 34 (2016): 23–37.
ร. ภู่มา, ส. สุดดี. ชื่อพรรณไม้แห่งประเทศไทย เต็ม สมิตินันท์ ฉบับแก้ไขเพิ่มเติม พ.ศ. 2557. กรุงเทพฯ: สำนักงานหอพรรณไม้ สำนักวิจัยการอนุรักษ์ป่าไม้และพันธุ์พืช กรมอุทยานแห่งชาติ สัตว์ป่า และพันธุ์พืช; 2557. หน้า 578.
ศูนย์ความหลากหลายทางชีวภาพ. ลิงลาว: พืชท้องถิ่นสู่เศรษฐกิจชุมชนเทพเสด็จ. เชียงรายฯ: มหาวิทยาลัยราชภัฎเชียงราย; 2555.
ว. นันต๊ะยานา. การจัดการต้นลิงลาวสู่เศรษฐกิจชุมชนตามแนวทางเศรษฐกิจพอเพียงของตำบลเทพเสด็จ อำเภอดอยสะเก็ด จังหวัดเชียงใหม่. วารสารวิจัยเพื่อการพัฒนาเชิงพื้นที่. 5 (2556): 5-20.
อ. เสละคร. ผลของ BA และ IBA ต่อการเพิ่มปริมาณหน่อและการออกรากของผักหวานป่าในสภาพปลอดเชื้อ. ราชภัฏเพชรบูรณ์สาร. 1 (2557): 86-93.
อ. กงบังเกิด, พ. กมล. ผลของไซโตไคนินและออกซินต่อการพัฒนาของเนื้อเยื่อเพาะเลี้ยงกระเจียวขาว. NU Science Journal. 2 (2006): 183-201.
J. Palee, S. Dheeranupattana, A. Jatisatienr, S. Wangkarn. Effects of BA and NAA on Micropropagation and Stemona Alkaloids Production of Stemona curtisii Hook.f. Chiang Mai J. Sci. 40 (2013): 356-363.
ย. ขจรผดุงกิตติ, อ. จาละ. อิทธิพลของ BA และ NAA ที่มีต่อการเพิ่มจำนวนยอดต้นพรมมิโดยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. Thai Journal of Science and Technology. 3 (2557): 7 - 14.
T. Murashige, F. Skoog. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15 (1962): 473-497.
H. Yıldırım, E. Tilkat, A. Onay, H.Ç. Ozen. In Vitro Embryo Culture of Apricot, Prunus armeniaca L. cv. Hacıhaliloğlu. International Journal of Science & Technology. 2 (2007): 99-104.
ด. บุณยเกียรติ. สรีรวิทยาของพืช. ภาควิชาพืชสวน คณะเกษตรศาสตร์ มหาวิทยาลัยเชียงใหม่; 2539.
A. McDonnell, M. Grant, J. Coons. Effects of Hot Water on Breaking Seed Dormancy of the Endangered Kankakee Mallow (Iliamna remota Greene (Malvaceae). Erigenia. 25 (2012): 8-13.
Z.A. Abubakar, A. Muhammad. Breaking Seed Dormancy in Tamarind (Tamarindus indica) A Case Study of Gombe Local Government Area. J. Appl. Sci. Environ. Manage. 17 (2013): 83-87.
L.D. Tung, E.P. Serrano. Effects of warm water in breaking dormancy of rice seed. Omonrice. 18 (2011): 129-136.
A.A. Aliloo, S. Darabinejad. Evaluation of Different Techniques for Breaking Seed Dormancy of Heliotropium europaeum L. (Boraginaceae). J. Biol. Environ. Sci. 7 (2013): 87-91.
ภ. พุทธรักษ์, ร. จันทร์เดช, ว. อยู่คง. การขยายพันธุ์บอนสี กุหลาบหิน และคว่ำตายหงายเป็น โดยเทคนิคการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. วารสารวิทยาศาสตร์ลาดกระบัง. 2 (2555): 1-15.
M.K. Sen, M.A.H.M. Jamal, S. Nasrin. Sterilization factors affect seed germination and proliferation of Achyranthes aspera cultured in vitro. Environmental and Experimental Biology. 11 (2013): 119-123.
A. Jan, K.M. Bhat, S.J.A. Bhat, M.A. Mir, M.A. Bhat, I.A. Wani, J.A. Rather. Surface sterilization method for reducing microbial contamination of field grown strawberry explants intended for in vitro culture. Afr. J. Biotechnol. 12 (2013): 5749-5753.
อ. สองศรี, ย. จิระเกียรติกุล, ภ. ฤทธิไชย, อ. อิฐรัตน์. การฟอกกำจัดเชื้อชิ้นส่วนข้อของ Dioscorea birmanica เพื่อการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อ. ว. วิทย์. กษ. 43 (พิเศษ) (2555):637-640.
D. Talei, M.S. Saad. M.K. Yusop, M.A. Kadir, A. Valdiani. Effects of Different Surface Sterilizers on Seed Germination and Contamination of King of Bitters (Andrographis paniculata Nees.). Am-Euras. J. Agric. & Environ. Sci. 10 (2011): 639-643.
M.P. Bridgen. A Review of Plant Embryo Culture. HortScience. 29 (1994): 1243-1246.
H. Fathi, U. Jahani. Review of embryo culture in fruit trees. Annals of Biological Research. 3 (2013): 4276-4281.
S.M.H. Nasr, S. Modanloo, H. Jalilvand, A.J. Mofidabadi. Seed Dormancy Breakage of Recalcitrant Yew Species (Taxus baccata L.) Using Embryo Culture. J. Biol. Sci. 7 (2007): 781-785.
S.J. Davarpanah, M. Lahouti, R. Karimian. Micropropagation of Common Yew Using Embryo Culture. Journal of Applied Biotechnology Reports. 1 (2014): 77-80.
T. Barekat, M. Otroshy, B. Samsam-Zadeh, A. Sadrarhami and A. Mokhtari. A novel approach for breaking seed dormancy and germination in Viola odorata (A medicinal plant). J. Nov. Appl. Sci. 2 (2013): 513-516.
I. Arrillaga, T. Marzo, J. Segura. Embryo Culture of Fraxinus ornus and Sorbus domestica Removes Seed Dormancy. HortScience. 27 (1992): 371.
L.L. Song, H.N. Zhang, H.Q. Zhao, Y.L. Jiang, M.F. Hou. In vitro Germination and Seedling Development of Taxus chinensis var. mairei by Embryo Culture. J. Agr. Sci. Tech. 16 (2014): 1355-1363.
T. Tezuka, H. Yokoyama, H. Tanaka, S. Shiozaki, M. Oda. Seed and Embryo Germination in Ardisia crenata. Journal of Botany. 2012 (2012): 1-7.
S. Kaveri, S. Rao. In vitro seed germination and Embryo Culture in Nothapodytes foetida (Wight) Sleumer. International Letters of Natural Sciences. 48 (2015): 23-31.
B. Bürün, E.Ç. Poyrazoglu. Embryo Culture in Barley (Hordeum vulgare L.). Turk J. Biol. 26 (2002): 175-180.
Z. Abbasin, S. Zamani, S. Movahedi, G. Khaksar, B.E. Sayed Tabatabaei. In vitro Micropropagation of Yew (Taxus baccata) and Production of Plantlets. Biotechnology. 9 (2010): 48-54.
N. Mohan, S. Nikdad, G. Singh. Studies on seed germination and embryo culture of Jatropha curcas L. under in vitro conditions. Biotechnol. Bioinf. Bioeng. 1 (2011): 187-194.
K. Payghamzadeh, S.K. Kazemitabar. The effects of BAP, IBA and genotypes on in vitro germination of immature walnut embryos. International Journal of Plant Production. 4 (2010): 309-322.
H.H. Daffalla, E. Abdellatef, E.A. Elhadi, M.M. Khalafalla. Effect of Growth Regulators on In Vitro Morphogenic Response of Boscia senegalensis (Pers.) Lam. Poir. Using Mature Zygotic Embryos Explants. Biotechnology Research International. 2011 (2011): 1-8.
A. Jala, N. Chanchula, T. Taychasinpitak. Multiplication New Shoots from Embryo Culture on Globba spp. International Transaction Journal of Engineering, Management, & Applied Sciences & Technologies. 4 (2013): 207-214.