ฤทธิ์ต้านการอักเสบและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดหยาบโปรตีนจากเหง้าเร่วหอมที่ปลูกในพื้นที่เพาะปลูกต่างๆ ของประเทศไทย
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินฤทธิ์ต้านการอักเสบและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดหยาบโปรตีนจากเหง้าเร่วหอมที่ปลูกในสามจังหวัดทางภาคตะวันออกของประเทศไทย ได้แก่ ระยอง จันทบุรี และตราด โดยทำการสกัดโปรตีนด้วยสารละลายบัฟเฟอร์ Tris-HCl และวิเคราะห์รูปแบบโปรตีนด้วยเทคนิค SDS-PAGE ฤทธิ์ต้านการอักเสบประเมินจากความสามารถในการยับยั้งการผลิตไนตริกออกไซด์ในเซลล์แมคโครฟาจ RAW 264.7 ที่ถูกกระตุ้นด้วยไลโพพอลิแซกคาร์ไรด์ ส่วนฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระประเมินด้วยวิธีการกำจัดอนุมูล DPPH ความสามารถในการีดิวซ์ และความสามารถในการคีเลทโลหะ ผลการทดลองแสดงให้เห็นว่าสารสกัดหยาบโปรตีนจากเหง้าเร่วหอมทุกตัวอย่างมีฤทธิ์ทางชีวภาพในลักษณะที่ขึ้นกับความเข้มข้น สารสกัดจากเหง้าที่เก็บจากจังหวัดตราดแสดงฤทธิ์ในการยับยั้งไนตริกออกไซด์ ฤทธิ์กำจัดอนุมูล DPPH และความสามารถในการีดิวซ์ได้สูงที่สุด ขณะที่ตัวอย่างจากจังหวัดระยองแสดงความสามารถในการคีเลทโลหะได้ดีที่สุด ผลการศึกษานี้ชี้ให้เห็นว่าแหล่งเพาะปลูกมีอิทธิพลต่อฤทธิ์ทางชีวภาพของสารสกัดหยาบโปรตีน และสนับสนุนการประยุกต์ใช้สารสกัดโปรตีนจากเหง้าเร่วหอมเป็นส่วนผสมในผลิตภัณฑ์อาหารฟังก์ชันหรือโภชนเภสัชในอนาคต
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
Jafarzadeh, S.; Qazanfarzadeh, Z.; Majzoobi, M.; et al. Alternative proteins; A path to sustainable diets and environment. Curr. Res. Food Sci. 2024, 9, 100882. https://doi.org/10.1016/j.crfs.2024.100882
Langyan, S.; Yadava, P.; Khan, F. N.; et al. Sustaining protein nutrition through plant-based foods. Front. Nutr. 2022, 8, 772573. https://doi.org/10.3389/fnut.2021.772573
Chantaranothai, C.; Palaga, T.; Karnchanatat, A.; Sangvanich, P. Inhibition of nitric oxide production in the macrophage-like RAW 264.7 cell line by protein from the rhizomes of Zingiberaceae plants. Prep. Biochem. Biotechnol. 2013, 43(1), 60-78. https://doi.org/10.1080/10826068.2012.697958
Inthuwanarud, K.; Sangvanich, P.; Puthong, S.; Karnchanatat, A. Antioxidant and antiproliferative activities of protein hydrolysate from the rhizomes of Zingiberaceae plants. Pak. J. Pharm. Sci. 2016, 29 (6), 1893-1900.
Sompinit, K.; Lersiripong, S.; Reamtong, O.; et al. In vitro study on novel bioactive peptides with antioxidant and antihypertensive properties from edible rhizomes. LWT 2020, 134, 110227. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2020.110227
Phonsena, P. Medicinal Plants in Khao Hin Son Herb Garden; Jettanaromphun Printing: 2007, 301 pp. (In Thai)
Poulsen, A. D.; Phonsena, P. Morphological variation and distribution of the useful ginger Etlingera pavieana (Zingiberaceae). Nord. J. Bot. 2017, 35, 467-475. https://doi.org/10.1111/njb.01407
Iawsipo, P.; Srisook, E.; Ponglikitmongkol, M.; Somwang, T.; Singaed, O. Cytotoxic effects of Etlingera pavieana rhizome on various cancer cells and identification of a potential anti-tumor component. J. Food Biochem. 2018, 42, e12508. https://doi.org/10.1111/jfbc.12508
Srisook, K.; Srisook, E. Pharmacological activities and phytochemicals of Etlingera pavieana (Pierre ex Gagnep) R.M.Sm. In Medicinal Plants – Use in Prevention and Treatment of Diseases. 2019. https://doi.org/10.5772/intechopen.89277
Poonasri, M.; Chiranthanut, N.; Srisook, E.; Srisook, K. Anti-neuroinflammatory activity of Etlingera pavieana rhizomal extract in LPS-induced microglial cells. Naresuan Phayao J. 2021, 14, 30-38.
Hao, J. Y.; Wan, Y.; Yao, X. H.; et al. Effect of different planting areas on the chemical compositions and hypoglycemic and antioxidant activities of mulberry leaf extracts in southern China. PLoS ONE 2018, 13, e0206930. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0206930
Khumaida, N.; Syukur, M.; Bintang, M.; Nurcholis, W. Phenolic and flavonoid content in ethanol extract and agro-morphological diversity of Curcuma aeruginosa accessions growing in West Java, Indonesia. Biodiversitas 2019, 20, 656-663. https://doi.org/10.13057/biodiv/d200306
Yahyaoui, A.; Arfaoui, M. O.; Rigane, G.; et al. Investigation on the chemical composition and antioxidant capacity of extracts from Crataegus azarolus L.: Effect of growing location of an important Tunisian medicinal plant. Chem. Afr. 2019, 2, 361-365. https://doi.org/10.1007/s42250-019-00054-1
Deesrisak, K.; Yingchutrakul, Y.; Krobthong, S.; Roytrakul, S.; Chatupheeraphat, C.; Subkorn, P.; Anurathapan, U.; Tanyong, D. Bioactive peptide isolated from sesame seeds inhibits cell proliferation and induces apoptosis and autophagy in leukemic cells. EXCLI J. 2021, 20, 709-721.
Srisook, K.; Srisook, E.; Nachaiyo, W.; Chan-In, M.; Thongbai, J.; Wongyoo, K.; Chawsuanthong, S.; Wannasri, K.; Intasuwan, S.; Watcharanawee, K. Bioassay-guided Isolation and mechanistic action of anti-Inflammatory agents from Clerodendrum inerme Leaves. J. Ethnopharmacol. 2015, 165, 94-102. https://doi.org/10.1016/j.jep.2015.02.043
Pechroj, S.; Kamonporn, P.; Oraphan, N.; et al. Comparative evaluation of antioxidant and anti-inflammatory activities of four seaweed species from the east coast of the Gulf of Thailand. J. Appl. Phycol. 2020, 13, 11-21.
Uthairat, C.; Srisook, E.; Srisook, K. Effects of drying methods and extraction conditions on total phenolic and flavonoid content and antioxidant activities of Helicteres isora L. fruit extracts. Burapha Sci. J. 2017, 22.
Alderton, W. K.; Cooper, C. E.; Knowles, R. G. Nitric oxide synthases: Structure, function, and inhibition. Biochem. J. 2001, 357, 593-615. https://doi.org/10.1042/bj3570593
Zedler, S.; Faist, E. The impact of endogenous triggers on trauma-associated inflammation. Curr. Opin. Crit. Care 2006, 12, 595-600. https://doi.org/10.1097/MCC.0b013e3280106806
Libby, P. Inflammatory mechanisms: The molecular basis of inflammation and disease. Nutr. Rev. 2007, 65, 140-146. https://doi.org/10.1301/nr.2007.dec.S140-S146
Elias, R. J.; Kellerby, S. S.; Decker, E. A. Antioxidant activity of proteins and peptides. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2008, 48, 430-441. https://doi.org/10.1080/10408390701425615
Ulrich, K.; Jakob, U. The role of thiols in antioxidant systems. Free Radic. Biol. Med. 2019, 140, 14-27. https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2019.05.035
Shi, Q.; Wang, J. J.; Chen, L.; et al. Fenton reaction-assisted photodynamic inactivation of calcined melamine sponge against Salmonella and its application. Food Res. Int. 2020, 151, 110847. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2021.110847
Canabady-Rochelle, L. L. S.; Selmeczi, K.; Collin, S.; Pasc, A.; Muhr, L.; Boschi-Muller, S. SPR screening of metal chelating peptides in a hydrolysate for their antioxidant properties. Food Chem. 2018, 239, 478-485. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2017.06.116
