ผลของการเสริมราแดง (Monascus spp.) ในอาหารต่อการเจริญเติบโต องค์ประกอบเลือด และความต้านทานเชื้อ Streptococcus agalactiae ใน ปลานิลแดง (Oreochromis niloticus × O. mossambicus)
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
ศึกษาผลของการเสริมราแดง (Monascus spp.) ต่อการเจริญเติบโต องค์ประกอบเลือด และความต้านทานเชื้อ Streptococcus agalactiae ในปลานิลแดง (Oreochromis niloticus × O. mossambicus) อาหารทดลองมี 4 สูตร กำหนดให้แต่ละสูตรมีโปรตีน (ร้อยละ 30) และไขมนั (ร้อยละ 7) ใกล้เคียงกันเสริมราแดงลงในอาหารร้อยละ 0 0.5 1 และ 2 ใช้ปลานิลแดงน้ำหนักเฉลี่ยเริ่มต้น 0.795 ± 0.003 กรัมต่อตัวจำนวน 20 ตัวต่อตู้ทดลองในตู้กระจกปริมาตรน้ำ 75 ลิตร ให้อาหารทดลองวันละ 2 ครั้ง โดยให้ปลากินจนอิ่มเป็นเวลา 50 วัน จากการทดลองพบว่า น้ำหนักเฉลี่ยต่อตัว อัตราการเจริญเติบโตจำเพาะ อัตราการเปลี่ยนอาหารเป็นเนื้อ และประสิทธิภาพการใช้โปรตีน ไม่มีความแตกต่างทางสถิติระหว่างชุดการทดลอง (p > 0.05) แต่ปริมาณอาหารที่กินมีค่าลดลง (p < 0.05) เมื่อปลาได้รับอาหารเสริมราแดงร้อยละ 1 และ 2 ด้านองค์ประกอบเลือดพบว่า กิจกรรมของเอนไซม์ไลโซไซม์และซีรั่มโปรตีนของปลาที่ได้รับอาหารเสริมราแดงร้อยละ 0.5 มีค่าสูงสุด (p < 0.05) ไม่พบความแตกต่างของอัตรารอดตายระหว่างชุดการทดลองภายหลังได้รับเชื้อ S. agalactiae (p > 0.05) ผลการทดลองแสดงให้เห็นวา่ สามารถเสริมราแดงในอาหารปลานิลแดงร้อยละ 0.5 โดยไม่ส่งผลกระทบต่อการเจริญเติบโต ประสิทธิภาพการใช้อาหาร และองค์ประกอบเลือด อย่างไรก็ตามการเสริมราแดงไม่มีผลต่อการป้องกันเชื้อ S. agalactiae
Article Details
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
เอกสารอ้างอิง
Pradeepkiran, J.A. (2019). Aquaculture role in global food security with nutritional value: a review. Translational Animal Science, 3(2), 903–910.
Pinthong, R., Rujanakraikarn, L., & Pattanagul, P. (2000). Production of pork sausages by adding Ang-kak to increase coloring. Khon Kaen Agriculture Journal, 28, 89–96.
Baigent, C., Blackwell, L., Emberson, J., Holland, L.E., Reith, C., Bhala, N., Peto, R., Barnes, E.H., Keech, A., Simes, J., & Collins, R. (2010). Efficacy and safety of more intensive lowering of LDL cholesterol: a meta-analysis of data from 170,000 participants in 26 randomised trials. The Lancet, 376(9753), 1670–1681.
Hsu, L.C., Liang, Y.H., Hsu, Y.W., Kuo, Y.H., & Pan, T.M. (2013). Anti-inflammatory properties of yellow and orange pigments from Monascus purpureus NTU 568. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 61(11), 2796–2802.
Cheng, C.F., & Pan, T.M. (2011). Protective effect of Monascus-fermented red mold rice against alcoholic liver disease by attenuating oxidative stress and inflammatory response. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 59(18), 9950–9957.
Kongbuntad, W., & Saenphet, S. (2016). Effects of red mold rice produced from Monascus purpureus CMU002U on growth performances and antioxidant activity of Japanese quail. International Journal of Poultry Science, 15(1), 8–14.
Kosolwach, S. (2014). Effects of pigment from Monascus sp. on color intensity and growth of fancy carp (Cyprinus carpio Linn) and Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone). Master’s thesis. Kasetsart University.
Pongthana, N., Nguyen, N.H., & Ponzoni, R.W. (2010). Comparative performance of four red tilapia strains and their crosses in fresh- and saline water environments. Aquaculture, 308(Supplement 1), 109–114.
Kohinoor, A.H.M., Modak, P.C., & Hussain, M.G. (1999). Growth and production performance of red tilapia and Nile tilapia (Oreochromis niloticus Lin.) under low-input culture system. Bangladesh Journal of Fisheries Research, 3(1), 11–17.
Suanyuk, N., Kong, F., Ko, D., Gilbert, G.L., & Supamattaya, K. (2008). Occurrence of rare genotypes of Streptococcus agalactiae in cultured red tilapia Oreochromis sp. and Nile tilapia O. niloticus in Thailand-Relationship to human isolates? Aquaculture, 284(1–4), 35–40.
Liu, G., Zhu, J., Chen, K., Gao, T., Yao, H., Liu, Y., Zhang, W., & Lu, C. (2016). Development of Streptococcus agalactiae vaccines for tilapia. Diseases of Aquatic Organisms, 122(2), 163–170. DOI: 10.3354/dao03084.
Association of Official Analytical Chemists. (1990). Official Methods of Analysis. 15th Edition. Washington D.C.: Association of Official Analytical Chemists.
Hardy, R.W., & Barrows, F.T. (2002). Diet formulation and manufacture. In: J.E. Halver & R.W. Hardy (eds.) Fish Nutrition. 505–600. San Diego, CA: Academic Press.
Blaxhall, P.C., & Daisley, K.W. (1973). Routine haematological methods for use with fish blood. Journal of Fish Biology, 5(6), 771–781.
Demers, N.E., & Bayne, C.J. (1997). The immediate effects of stress on hormones and plasma lysozyme in rainbow trout. Developmental and Comparative Immunology, 21(4), 363–373.
Bradford, M.M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein using the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1–2), 248–254.
Kumari, H.P.M., Naidu, K.A., Vishwanatha, S., Narasimhamurthy, K., & Vijayalakshmi, G. (2009). Safety evaluation of Monascus purpureus red mould rice in albino rats. Food and Chemical Toxicology, 47(8), 1739–1746.
Agboyibor, C., Kong, W.B., Zhang, A.M., & Niu, S.Q. (2019). Nutrition regulation for the production of Monascus red and yellow pigment with submerged fermentation by Monascus purpureus. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, 21, 101276. https://doi.org/10.1016/j.bcab.2019.101276.
Ribeiro, S.M.R., Chagas, G.M., Campello, A.P., & Kluppel, M.L.W. (1997). Mechanism of citrinininduced dysfunction of mitochondria. V. Effect on the homeostasis of the reactive oxygen species. Cell Biochemistry and Function, 15(3), 203–209.
Wang, J.J., & Pan, T.M. (2003). Effect of red mold rice supplements on serum and egg yolk cholesterol levels of laying hens. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 51(16), 4824–4829.
Thongprajukaew, K., Kovitvadhi, U., Somsueb, P., & Kovitvadhi, S. (2013). Effects of red monascal rice supplementation on growth, digestive function and oocyte maturation in Siamese fighting fish (Betta splendens Regan, 1910). African Journal of Biotechnology, 12(45), 6400–6410.
Yuangsoi, B., Jintasataporn, O., Areechon, N., & Tabthipwon, P. 2008. Validated TLC-densitometric analysis for determination of carotenoids in fancy carp (Cyprinus carpio) serum and the application for pharmacokinetic parameter assessment. Songklanakarin Journal of Science and Technology, 30(6), 693–700.
Lin, Y.L., Wang, T.H., Lee, M.H., & Su, N.W. (2008). Biologically active components and nutraceuticals in the Monascus-fermented rice: a review. Applied Microbiology and Biotechnology, 77(5), 965–973.
Alexopolos, C.J., Mims, C.W., & Blackwell, M. (1996). Introductory mycology. New York: John Wiley & Sons.
Adnan, A.R., Suharto, & Triyono, E.A. (2012). Red yeast rice (Monascus purpureus) extract increases interleukin-2 level in dengue infection patients. Folia Medica Indonesiana, 48(2), 58–66.
Kim, C., Jung, H., Kim, Y.O., & Shin, C.S. (2006). Antimicrobial activities of amino acid derivatives of Monascus pigments. FEMS Microbiology Letters, 264(1), 117–124.
