Drug Resistance of Bacteria in Cage Cultured Tilapia from Tapi River, Nakhon Si Thammarat Province
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
บทคัดย่อ
วัตถุประสงค์ของงานวิจัยนี้เพื่อตรวจสอบการดื้อยาของแบคทีเรียก่อโรคที่แยกได้จากปลานิลที่เลี้ยงในแม่น้ำตาปี ตำบลนากะชะ อำเภอฉวาง จังหวัดนครศรีธรรมราช และตำบลทุ่งใหญ่ อำเภอทุ่งใหญ่ จังหวัด นครศรีธรรมราช จำนวน 10 ฟาร์ม โดยทำการเก็บตัวอย่างในเดือนเมษายน-พฤษภาคม 2562 พบปลานิลติดเชื้อ Streptococcus agalactiae และ Aeromonas hydrophila ซึ่งได้ยืนยันผลด้วยเทคนิคทางพีซีอาร์ จากนั้นทำการทดสอบความไวต่อยาปฏิชีวนะ จำนวน 8 ชนิด ได้แก่ Amoxicillin-clavulanate 30 µg, Cephalexin 30 µg, Gentamicin 10 µg, Enrofloxacin 5 µg, Ciprofloxacin 5 µg, Sulfamethoxazole 25 µg, Oxytetracycline 30 µg และ Tetracycline 30 µg ด้วยเทคนิค Disk diffusion assay โดยผลการทดสอบพบว่าเชื้อ Aeromonas hydrophila มีการดื้อต่อยาปฏิชีวนะสูงสุดคือ Cephalexin 80% และ Amoxicillin-clavulanate 30%, Oxytetracycline 30%, Tetracycline 30%, Enrofloxacin 20%, Gentamicin 10%, Ciprofloxacin 0% และSulfamethoxazole 0% ตามลำดับ ส่วนผลการทดสอบในเชื้อ Streptococcus agalactiae พบว่ามีการดื้อต่อยาปฏิชีวนะสูงสุดคือ คือ Cephalexin 75%, Tetracycline 50%, Amoxicillin-clavulanate 25%, Oxytetracycline 25%, Gentamicin 25%, Enrofloxacin 0%, Ciprofloxacin 0% และ Sulfamethoxazole 0% โดยภาพรวมของทั้งสองเชื้อแบคทีเรีย พบว่าทั้ง S. agalactiae และ A. hydrophila มีการดื้อยา cephalexin (78.57%) สูงที่สุด รองลงมา Tetracycline(35.71%), Amoxicillin-clavulanate(28.57%), Oxytetracycline(28.57%) และต่ำสุด คือ Enrofloxacin(14.28%), Gentamicin(14.28%) และไม่พบการดื้อต่อยา Sulfamethoxazole (0%) และ Ciprofloxacin (0%) การดื้อยาที่เกิดขึ้นส่วนหนึ่งอาจเนื่องมาจากแหล่งน้ำมีการปนเปื้อนน้ำทิ้งชุมชน หรือน้ำทิ้งจากโรงพยาบาล และบ่อเลี้ยงสัตว์น้ำบริเวณต้นน้ำ ซึ่งอาจส่งผลให้แบคทีเรียในแม่น้ำมีการพัฒนาสายพันธุ์ที่ดื้อต่อยาปฏิชีวนะเพิ่มสูงขึ้นได้เช่นกัน แนวทางการใช้ระบบความปลอดภัยทางชีวภาพ (biosecurity) การคัดเลือกและปรับปรุงสายพันธุ์สัตว์น้ำที่ต้านทานโรค และการใช้จุลินทรีย์และสารกระตุ้นภูมิคุ้มกัน จึงเป็นสิ่งจำเป็นอย่างยิ่งเพื่อลดการปนเปื้อนที่จะนำไปสู่การดื้อยาของแบคทีเรีย
Article Details
References
Aboyadak, I.B., GMA, N., Goda, A.A., Aboelgalagel, W.H. & Alnokrashy, A. (2015). Molecular detection of Aeromonas hydrophila as the main Cause of outbreak in tilapia farms in Egypt. Journal of Aquaculture & Marine Biology, 2(5),1-4.
Alanis, A.J. (2005). Resistance to antibiotics: Are we in the post-antibiotic era. Archives of Medical Research, 36(6), 697-705.
Al-Bahry, S.N., Mahmoud, I.Y., Al-Belushi, K.I.A., Elshafie, A.E. Al-Harthy, A. & Bakheit. C.K. (2009). Coastal sewage discharge and its impact on fish with reference to antibiotic resistant enteric bacteria and enteric pathogens as bio-indicators of pollution. Chemosphere, 77(11), 1534-1539.
Andrews, J.M. (2001). BSAC standardized disc susceptibility testing method. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 48 (Suppl.S1), 43–57.
Andrews, J.M. (2009). BSAC standardized disc susceptibility testing method (version 8). Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 64(3), 454-489.
Arungamol, S., Jitjak, T., Patchanee, N. & Jensiriwong, S. (2017). The testing of antibiotic sensitivity from isolated Aeromonas hydrophila from infected lowland frog (Hoplobatrachus rugulosus) in Sakon Nakhon province. Prawarun Agricultural Journal, 14(2), 238-246.
Ashiru, A.W., Uaboi-Egbeni, P.O., Oguntowo, J. E., & Idika, C.N. (2011). Isolation and antibiotic profile of Aeromonas species from tilapia fish (Tilapia nilotica) and catfish (Clarias betrachus). Pakistan Journal of Nutrition, 10(10), 982-986.
Baron, S., Granier, S.A., Larvor, E., Jouy, E., Cineux, M., Wilhelm, A., Gassilloud, B., Le Bouquin, S., Kempf, I. & Chauvin, C. (2017). Aeromonas diversity and antimicrobial susceptibility in freshwater an attempt to set generic epidemiological cut-off values. Frontiers in Microbiology, 8, 503.
Buchanan, R.E. & Gibbon, N.E. (1974). The shorten Bergey's manual of determination bacteriology. Baltimore: The Williams & Wilkins Co.
Chitmanat, C. (2013). Diseases of tilapia. Chiang Mai Veterinary Journal, 11(1), 75-86.
Chitmanat, C., Whangchai, N., Priktong, T., Itayama, T. & Kawabata, Z. (2011). Drug resistance of bacteria in cage-cultured red tilapia from the Upper Ping river, Chiangmai. In 49th KUCON Full paper at 2011. p.383-390.
Chelossi, E., Vezzulli, L., Milano, A., Branzoni, M., Fabiano, M., Riccardi, G. & Banat, I.M. (2003). Antibiotic resistance of benthic bacteria in fish-farm and control sediments of the Western Mediterranean. Aquaculture, 219(1-4), 83-97.
Clinical and laboratory standards institute. (2008). Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility tests for bacteria isolated from animals: Approved Standard-Third Edition M31-A3. Wayne, PA, USA.
Darwish, A.M. & Ismaiel, A.A. (2005). Genetic diversity of Flavobacterium columnare examined by restriction fragment length polymorphism RNA gene and the and sequencing of the 16S ribosomal 16S-23S rDNA spacer. Molecular and Cellular Probes, 19(4), 267-274.
European committee on antimicrobial susceptibility testing. (2017). Streptococcus agalactiae calibration of zone diameter breakpoints to MIC values. EUCAST. Verson 2.
Goni-Urriza, M., Capdepuy, M., Arpin, C., Raymond, N., Caumette, P. & Quentin, C. (2000). Impact of an urban effluent on antibiotic resistance of riverine Enterobacteriaceae and Aeromonas spp.. Applied and Environmental Microbiology, 6(1) , 125-132.
Hudzicki, J. (2009). Kirby-Bauer disk diffusion susceptibility test protocol: American Society for Microbiology. Retrieved from: http://www.asmscience.org/content/education/protocol/protocol.
Laith, A.A., Ambak, M.A., Hassan, M., Sheriff, S.M., Nadirah, M., Draman, A.S., Wahab W., Wan Ibrahim, W.N., Aznan, A., Jabar, A. & Najiah, M. (2017). Molecular identification and histopathological study of natural Streptococcus agalactiae infection in hybrid tilapia (Oreochromis niloticus). Veterinary World, 10(1), 101-111.
Members of the SFM antibiogram committee. (2003). Comite´ de l’Antibiogramme de la socie´te´ franc¸aise de microbiologie report 2003. International Journal of Antimicrobial Agents, 21(4), 364-391.
Özoğul, F., Küley, E. & Özoğul, Y. (2010). Usefulness of API test strips for identification of bacterial flora in blue crab (Callinectes sapidus) caught from Akyatan lagoon (ADANA-TURKEY). Journal of Fisheries Sciences, 4(1), 1-7.
Pathak, S.P. & Gopal, K. 2005. Occurrence of antibiotic and metal resistance in bacteria from organs of river fish. Environmental Research, 98(1), 100-103.
Penders, J. & Stobberingh, E.E. (2008). Antibiotic resistance of motile aeromonads in indoor catfish and eel farms in the southern part of The Netherlands. International Journal Antimicrobial Agents, 31(3), 261-265.
Rhodes, G., Huys, G., Swings, J., McGann, P. Hiney, M. & Pickup., R.W. (2000). Distribution of oxytetracycline resistance plasmids between Aeromonads in hospital and aquaculture environments: Implication of Tn1721 in dissemination of the tetracycline resistance determinant Tet A. Applied and Environmental Microbiology, 66(9), 3883-3890.
Samal, S.K., Das, B.K. & Pal, B.B. (2014). Isolation, biochemical characterization, antibiotic susceptibility study of Aeromonas hydrophila isolated from freshwater fish. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 3(12), 259-267.
Shoemaker, K.L., Parson, N.M. & Adamo, S.A. (2006). Egg-laying behaviour following infection in the cricket Gryllus texensis. Canadian Journal of Zoology, 84(3), 412-418.
Usui, M., Iwasa, T., Fukuda, A., Sato, T., Okubo, T. & Tamura, Y. (2016). Use of Aeromonas spp. as general indicators of antimicrobial susceptibility among bacteria in aquatic environments in Thailand. Frontiers in Microbiology, 7, 710.
Vanita, D., Priyanka, C., Devinder, T., Rajesh, K. & Anuradha, C. (2013). Antimicrobial susceptibility pattern of betahaemolytic group A, C and G streptococci isolated from North India. Journal of Medical Microbiology, 62(3), 386-393.