การเจริญเติบโตระดับขยายและการผลิตไฟโคไซยานินของสาหร่าย Spirulina platensis TISTR 8666

ผู้แต่ง

  • นวลจันทร์ ใจใส ศูนย์ความหลากหลายทางชีวภาพ สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย
  • สายัณห์ นันชนะ ศูนย์ความหลากหลายทางชีวภาพ สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย

คำสำคัญ:

สาหร่ายขนาดเล็ก, ไซยาโนแบคทีเรีย, สไปรูลินา, ไฟโคไซยานิน

บทคัดย่อ

งานวิจัยนี้ศึกษาการเจริญเติบโตสำหรับการผลิตไฟโคไซยานิน ระดับขยายปริมาตร 800 ลิตร กลางแจ้งของสาหร่าย Spirulina platensis TISTR 8666 การศึกษาพบว่า Spirulina platensis TISTR 8666 มีศักยภาพในการเจริญเติบโตระดับขยายกลางแจ้ง ซึ่งผลผลิตชีวมวลแห้งมากกว่า 0.60 กรัมต่อลิตร ที่เวลาเพาะเลี้ยง 14-28 วัน และมีปริมาณโปรตีนรวม 44.39 เปอร์เซ็นต์ กรดแอมิโนหลักของชีวมวล คือ กรดกลูตามิก แอสพาร์ติก และลิวซีน มีปริมาณ 4487.70, 3012.71 และ 2655.52 มิลลิกรัมต่อ 100 กรัม ตามลำดับ ชีวมวลสาหร่ายนี้ตรวจไม่พบการปนเปื้อนต่อเชื้อก่อโรค Clostridium perfringens, Escherichia coli, Salmonella spp. และ Staphylococcus aureus นอกจากนี้ชีวมวลสาหร่ายตรวจพบปริมาณตะกั่วและสารหนู น้อยกว่า 0.5 และ 0.31±0.07 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม ตามลำดับ ชีวมวลสาหร่ายนี้เมื่อนำไปสกัดในอัตราส่วน 1:20 น้ำหนักต่อปริมาตร ด้วยตัวละลายโพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ที่ความเข้มข้น 0.1 โมลาร์ pH 7.0 ให้ผลผลิตสารสกัดหยาบไฟโคไซยานิน 78 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งมีความบริสุทธิ์เทียบเท่ากับไฟโคไซยานินเกรดอาหาร เนื่องจากอัตราส่วนความบริสุทธิ์ (A620/A280) มากกว่า 0.7 เมื่อทำการศึกษาฤทธิ์ทางชีวภาพของสารสกัดหยาบไฟโคไซยานิน พบว่ามีปริมาณฟีนอลรวม เท่ากับ 1311.83±1.31 มิลลิกรัมสมมูลแกลลิกแอซิดต่อ 100 กรัม ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ DPPH และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ABTS ความเข้มข้นที่ยับยั้งอนุมูลอิสระได้ 50 เปอร์เซ็นต์ (IC50) เท่ากับความเข้มข้น 0.6532 และ 2.0290 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ

Downloads

Download data is not yet available.

เอกสารอ้างอิง

Bhaskar, S. U., Gopalaswamy, G., and Raghu, R. (2005). A simple method for efficient extraction and purification of c-phycocyanin from Spirulina platensis Geitler. Indian Journal of Experimental Biology, 43, 277-279.

Cherng, S. C., Cheng, S. N., Tarn, A., and Chou, T. C. (2007). Anti-inflammatory activity of c-phycocyanin in lipopolysaccharide-stimulated raw 264.7 macrophages. The Journal of Life Sciences, 81, 1431-1435.

Manconia, M., Pendás, J., Ledón, N., Moreira, T., Sinico, C., Saso, L., and Fadda, A. M. (2009). Phycocyanin liposomes for topical anti-inflammatory activity: In-vitro in-vivo studies. The Journal of Pharmacy and Pharmacology, 61, 423-430.

Vo, T. S., Ryu, B. M., and Kim, S. K. (2013). Purification of novel anti-inflammatory peptides from enzymatic hydrolysate of the edible microalgal Spirulina maxima. Journal of Functional Foods, 5(3), 1336-1346.

Antelo, F. S., Anschau, A., Costa, J. A. V., and Kalil, S. J. (2010). Extraction and purification of c-phycocyanin from spirulina platensis in conventional and integrated aqueous two-phase systems. Journal of the Brazilian Chemical Society, 21(5), 921-926.

Kim, S.-K., Ravichandran, Y. D., Khan, S. B., and Kim, Y. T. (2008). Prospective of the cosmeceuticals derived from marine organisms. Biotechnology and Bioprocess Engineering, 13(5), 511-523. https://doi.org/10.1007/s12257-008-0113-5

Yoshida, A., Takagaki, Y., and Nishimune, T. (1996). Enzyme immunoassay for phycocyanin as the main component of spirulina color in foods. Bioscience Biotechnology and Biochemistry, 60(1), 57-60. https://doi.org/10.1271/bbb.60.57

Ou, Y., Lin, L., Pan, Q., Yang, X., and Cheng, X. (2012). Preventive effect of phycocyanin from Spirulina platensis on alloxaninjured mice. Environmental Toxicology and Pharmacology, 34(3), 721-726. https://doi.org/10.1016/j.etap.2012.09.016

Cherdchoo, S., Srinuansom, K., Pattanakaitcheewin, S., Promya, J., Montien-art, B., and Traichaiyaporn, S. (2010). Cultivation of Spirulina platensis in liquid fermentation medium of low cost diet. Journal of Fisheries Technology Research, 4(2), 26-33.

Phomtanaphun, A., Pinta, K., and Prommana, R. (2015). Effect of cultural media on antioxidative activity of Spirulina platensis. Naresuan Phayao Journal Health Science, Science and Technology, 8(3),150-154.

Zarrouk, C. (1966). Contribution a l’etude d’une cyanobacterie: influence de divers facteurs physiques et chimiques sur la croissance et la photosynthese de Spirulina maxima (Setchell et Gardner) Geitler. [Unpublished doctoral dissertation]. University of Paris.

Soni, B., Kalavadia, B., Trivedi, U., and Madamwar, D. (2006). Extraction purification and characterization of phycocyanin from Oscillatoria quadripunctulata-Isolated from the rocky. Process Biochemistry, 41, 2017-2023.

Fernández-Rojas, B., Hernández-Juárez, J., and Pedraza-Chaverri, J. (2014). Nutraceutical properties of phycocyanin. Journal of Functional Foods, 11, 375-392.

Singleton, V. L., and Rossi, J. A. (1965). Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture, 16, 144-158.

Morais, D. R., Rotta, E. M., Sargi, S. C., Schmidt, E. M., Bonafe, E. G., Eberlin, M. N., Sawaya, A. C. H. F., and Visentainer, J. V. (2015). Antioxidant activity, phenolics and UPLC-ESI (-)-MS of extracts from different tropical fruits parts and processed peels. Food Research International, 77(3), 392-399.

Dudonné, S., Vitrac, X., Coutière, P., Woillez, M., and Mérillon, J. (2009). Comparative Study of Antioxidant Properties and Total Phenolic Content of 30 Plant Extracts of Industrial Interest Using DPPH, ABTS, FRAP, SOD, and ORAC Assays. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 57(5), 1768–1774.

Giada, M. L. R., and Filho, J. M. (2006). The importance of dietary phenolic compounds in the promotion of human health.

Publicatio UEPG: Ciências Biológicas e da Saúde, 12(4), 7-15.

El-sayed, A. E. B., and El-sheekh, M. M. (2018). Outdoor Cultivation of Spirulina platensis for Mass Production. Notulae Scientia Biologicae, 10(1), 38-44. https://doi.org/10.15835/nsb10110177

Lupatani, A. L., Colla, L. M., Canan, C., and Colla, E. (2016). Potential application of microalga Spirulina platensis as a protein source. Journal of the Science of Food and Agriculture, 97, 724-732.

Gabr, G. A., El-Sayed, S. M., and Hikal, M. S. (2020). Antioxidant Activities of Phycocyanin: A Bioactive Compound from Spirulina platensis. Journal of Pharmaceutical Research International, 32(2), 73-85.

Saranraj, P., and Sivasakthi, S. (2014). Spirulina platensis-Food for Future: A Review. Asian Journal of Pharmaceutical Science and Technology, 4(1), 26-33.

Notification of the Ministry of Public Health No. 416 B.E. 2563 Issued by virtue of the Food Act B.E. 2522 Re : Prescribing the quality or standard, principles, conditions and methods of analysis for pathogenic microorganisms in foods. (2020). Published in the Government Gazette Volume 137, Special Part 237 Ngor Page 9.

Notification of the Ministry of Public Health No. 414 B.E. 2563 Issued by virtue of the Food Act B.E. 2522 Re : Standards for Contaminants in Food. (2020). Published in the Government Gazette Volume 137, Special Part 118 Ngor Page 17.

Souza, T. D., Prietto, L., Souza, M. M., and Furlong, E. B. (2015). Profile, antioxidant potential, and applicability of phenolic compounds extracted from Spirulina platensis. African Journal of Biotechnology, 14(41), 2903-2909.

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2024-04-30

รูปแบบการอ้างอิง

ใจใส น., & นันชนะ ส. (2024). การเจริญเติบโตระดับขยายและการผลิตไฟโคไซยานินของสาหร่าย Spirulina platensis TISTR 8666. วารสารมหาวิทยาลัยศรีนครินทรวิโรฒ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 16(31, January-June), 1–13, Article 253643. สืบค้น จาก https://ph02.tci-thaijo.org/index.php/swujournal/article/view/253643