ฤทธิ์ต้านออกซิเดชันและฤทธิ์ความเป็นพิษต่อเซลล์ของสารสกัดพืชท้องถิ่นของไทย
คำสำคัญ:
ต้านอนุมูลอิสระ, ความเป็นพิษต่อเซลล์, หญ้าแห้วหมู, กระชายดำบทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อสกัดสารออกฤทธิ์จากพืชพื้นบ้านในประเทศไทยทั้งหมด 8 ชนิด โดยใช้ตัวทำละลายเอทานอลและเฮกเซนศึกษาฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ปริมาณสารประกอบฟีนอลิกทั้งหมด ปริมาณสารประกอบฟลาโวนอยด์ พบว่าสารสกัดพืชในตัวทำละลายเอทานอลให้ร้อยละผลผลิตสูงกว่าเฮกเซนอย่างมีนัยสำคัญ พบว่าสารสกัดหยาบหญ้าแห้วหมู (Cyperus rotundus) ในตัวทำละลายเอทานอลมีปริมาณสารประกอบฟีนอลิกทั้งหมดสูงสุดเท่ากับ 11.617±0.289 มิลลิกรัมสมมูลของกรดแกลลิก/กรัมน้ำหนักแห้ง และสารประกอบฟลาโวนอยด์มีค่าสูงที่สุด มีค่าเท่ากับ 7.973±0.231 มิลลิกรัมสมมูลของกรดแกลลิก/กรัมน้ำหนักแห้ง นอกจากนั้นสารสกัดหญ้าแห้วหมู (C. rodundus) มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ DPPH และ ABTS ได้สูงสุด มีค่า IC50 เท่ากับ 0.408±0.011 และ 0.402±0.0071 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ นอกจากนั้นสารสกัดหยาบหญ้าแห้วหมูในตัวทำละลายเอทานอลมีปริมาณสารคาเทชิน m/z 289.1 และแอนโทไชยานิน m/z 463.2 เมื่อวิเคราะห์ด้วยลิควิดโครมาโทกราฟี-แมสสเปกโทรเมตรี (LC-MS) โดยปริมาณคาเทชินนี้มีความสำคัญในการยืนยันฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในงานวิจัยนี้ได้ศึกษาความเป็นพิษของหญ้าแห้วหมู (C. rodundus) ต่อเซลล์ NCI-H187 โดยมีค่า IC5042.47 ± 2.66 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร และยังพบความเป็นพิษต่อเซลล์ของกระชายดำ (Kaempferia parviflora) ต่อเซลล์มะเร็งช่องปาก (KB cell line) และเซลล์มะเร็งปอด (NCI-H 187 cell line) โดยมีค่า IC50 ที่ 60.24±1.73 และ 27.22±1.04 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร ตามลำดับ จากผลการทดลองชี้ให้เห็นว่าหญ้าแห้วหมู (C. rodundus) และกระชายดำ (K. parviflora) เป็นแหล่งสารต้านอนุมูลอิสระที่ดีและเป็นพืชที่มีศักยภาพในการต้านเซลล์เซลล์มะเร็งช่องปากและเซลล์มะเร็งปอด
Downloads
เอกสารอ้างอิง
Palipoch, S., Punsawad, C., and Suwannalert, P. (2013). Thunbergia laurifolia, a new choice of natural antioxidant to prevent oxidative stress-related pathology: A review. Journal of Medicinal Plants Research, 7(12), 698-701. http://doi.org/10.5897/JMPR012x.003
Al-Owaisi, M., Al-Hadiwi, N., and Khan, S. A. (2014). GC-MS analysis, determination of total phenolics, flavonoid content free radical scavenging activities of various crude extracts of Moringa peregrina (Forssk.) Fiori leaves. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 4(12), 964-970. http://doi.org/10.12980/APJTB.201414B295
Tantengco, O. A. G., and Jacinto, S. D. (2015). Cytotoxic activity of crude extracts fractions from Premna odorata (Blanco), Artocarpus camansi (Blanco) Gliricidia sepium (Jacq.) against selected human cancer cell lines. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 5(12), 1037-1041. http://doi.org/10.1016/j.apjtb.2015.09.011
Pitt, J. J. (2009). Principles applications of liquid chromatography-mass spectrometry in clinical biochemistry. The Clinical Biochemist Reviews, 30(1), 19-34.
Figueroa, L. A., Navarro, L. B., Vera, M. P., and Petricevich, V. L. (2014). Antioxidant activity, total phenolic flavonoid contents, cytotoxicity evaluation of Bougainvillea xbuttiana. International Journal of Pharmacy Pharmaceutical Sciences, 6(5), 497-502.
Br-Williams, W., Cuvelier, M. E., and Berset, C. (1995). Antioxidative activity of phenolic composition of commercial extracts of sage rosemary. Lwt, 28, 25-30.
O'brien, J., Wilson, I., Orton, T., and Pognan, F. (2000). Investigation of the Alamar Blue (resazurin) fluorescent dye for the assessment of mammalian cell cytotoxicity. European Journal of Biochemistry, 267(17), 5421-5426.
Bao, J., Cai, Y., Sun, M., Wang, G., and Corke, H. (2005). Anthocyanins, flavanols, free radical scavenging activity of Chinese bayberry (Myrica rubra) extracts their color properties stability. Journal of Agricultural Food Chemistry, 53(6), 2327-2332.
Hunt, L., Jordan, M., De Jesus, M., and Wurm, F. M. (1999). GFP‐expressing mammalian cells for fast, sensitive, noninvasive cell growth assessment in a kinetic mode. Biotechnology Bioengineering, 65(2), 201-205.
Boonsong, P., Laohakunjit, N., and Kerdchoechuen, O. (2012). Natural pigments from six species of Thai plants extracted by water for hair dyeing product application. Journal of Cleaner Production, 37, 93-106. http://doi.org/10.1016/j.jclepro.2012.06.013
Sriket, P. (2014). Chemical components and antioxidant activities of Thai local vegetables. KMITL Science and Technology Journal, 14(1), 18-23.
Tian, L., Zhao, Y., Guo, C., and Yang, X. (2011). A comparative study on the antioxidant activities of an acidic polysaccharide various solvent extracts derived from herbal Houttuynia cordata. Carbohydrate Polymers, 83(2), 537-544. http://doi.org/10.1016/j.carbpol.2010.08.023
Settharaksa, S., Jongjareonrak, A., Hmadhlu, P., Chansuwan, W., and Siripongvutikorn, S. (2012). Flavonoid, phenolic contents antioxidant properties of Thai hot curry paste extract its ingredients as affected of pH, solvent types high temperature. International Food Research Journal, 19(4), 1581-1587.
Chen, J., Yang, J., Ma, L., Li, J., Shahzad, N., and Kim, C. K. (2020). Structure-antioxidant activity relationship of methoxy, phenolic hydroxyl, carboxylic acid groups of phenolic acids. Scientific Reports, 10(1), 1-9.
De Bruijn, J., Loyola, C., Aqueveque, P., Cañumir, J., Cortéz, M., and France, A. (2009). Antioxidant properties of extracts obtained from Grifola gargal mushrooms. Micologia Aplicada International, 21(1), 11-18.
Samariya, K., and Sarin, R. (2013). Isolation identification of flavonoids from Cyperus rotundus Linn. in vivo in vitro. Journal of Drug Delivery Therapeutics, 3(2), 109-113.
Vichitphan, S., Vichitphan, K., and Sirikhansaeng, P. (2007). Flavonoid content and antioxidant activity of krachai-dum (Kaempferia parviflora) wine. KMITL Science and Technology Journal, 7(2-1), 97-105.
Tachakittirungrod, S., Okonogi, S., and Chowwanapoonpohn, S. (2007). Study on antioxidant activity of certain plants in Thai: Mechanism of antioxidant action of guava leaf extract. Food Chemistry, 103(2), 381-388.
Priya, R., Prathapan, A., Raghu, K. G., and Menon, A. N. (2012). Chemical composition in vitro antioxidative potential of essential oil isolated from Curcuma longa L. leaves. Asian Pacific Journal of Tropical Biomedicine, 2(2), S695-S699.
Kamala, A., Middha, S. K., Gopinath, C., Sindhura, H. S., and Karigar, C. S. (2018). In vitro antioxidant potentials of Cyperus rotundus L. rhizome extracts their phytochemical analysis. Pharmacognosy Magazine, 14(54), 261-267.
Wanich, S., and Yenjai, C. (2009). Amino nitro derivatives of 5, 7-dimethoxyflavone from Kaempferia parviflora cytotoxicity against KB cell line. Archives of Pharmacal Research, 32(9), 1185-1189.
Hossain, M., Wongsrikaew, N., Yoo, G. W., Han, J., and Shin, C. G. (2012). Cytotoxic effects of polymethoxyflavones isolated from Kaempferia parviflora. Journal of the Korean Society for Applied Biological Chemistry, 55(4), 471-476. http://doi.org/10.1007/s13765-012-2026-4
Yenjai, C., Prasanphen, K., Daodee, S., Wongpanich, V., and Kittakoop, P. (2004). Bioactive flavonoids from Kaempferia parviflora. Fitoterapia, 75(1), 89-92. http://doi.org/10.1016/j.fitote.2003.08.017
Wangthong, S., Palaga, T., Rengpipat, S., Wanichwecharungruang, S. P., Chanchaisak, P., and Heinrich, M. (2010). Biological activities safety of Thanaka (Hesperethusa crenulata) stem bark. Journal of Ethnopharmacology, 132(2), 466-472. http://doi.org/10.1016/j.jep.2010.08.046
Mongelli, E., Desmarchelier, C., Talou, J. R., Coussio, J., and Ciccia, G. (1997). In vitro antioxidant cytotoxic activity of extracts of Baccharis coridifolia DC. Journal of ethnopharmacology, 58(3), 157-163. http://doi.org/10.1016/S0378-8741(97)00106-2
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
ลิขสิทธิ์ (c) 2024 วารสารมหาวิทยาลัยศรีนครินทรวิโรฒ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี
อนุญาตภายใต้เงื่อนไข Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
วารสารมหาวิทยาลัยศรีนครินทรวิโรฒ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี อยู่ภายใต้การอนุญาต Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivs 4.0 International (CC-BY-NC-ND 4.0) เว้นแต่จะระบุไว้เป็นอย่างอื่น โปรดอ่านหน้านโยบายของวารสารสำหรับข้อมูลเพิ่มเติมเกี่ยวกับการเข้าถึงแบบเปิด ลิขสิทธิ์ และการอนุญาต
