การวิเคราะห์ปริมาณสารสำคัญและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดใบกะเปียดเครือ

Main Article Content

หวันฮูดา ปะดุกา
ปัญจพร สันทัดเลขา
ทวีภรณ์ คีรีคช
นงลักษณ์ กุลวรรัตต์

บทคัดย่อ

กะเปียดเครือ (Premna trichostoma Miq.) จัดอยู่ในวงศ์ Lamiaceae มีการกระจายพันธุ์ในแถบเอเชียรวมถึงประเทศไทย หมอพื้นบ้านใช้ใบ คั้นน้ำดื่ม ชโลม และอาบ รักษาอาการไข้ ตัวร้อน การศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อวิเคราะห์หาปริมาณสารสำคัญ และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดน้ำจากใบกะเปียดเครือ โดยวิเคราะห์ปริมาณสารประกอบฟีนอลิกรวมด้วยวิธี Folin-Ciocalteu Method วิเคราะห์ปริมาณสารประกอบฟลาโวนอยด์รวมด้วยวิธี Aluminium Chloride Method วิเคราะห์หาปริมาณสาร Apigenin และ Kaempferol ด้วยเทคนิคโครมาโตกราฟีของเหลวสมรรถนะสูง และทดสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระด้วยวิธี DPPH และ ABTS ผลการศึกษาพบว่า สารสกัดใบกะเปียดเครือมีปริมาณฟีนอลิกรวม ปริมาณฟลาโวนอยด์รวม ปริมาณสาร Apigenin และ Kaempferol เท่ากับ 46.45±15.30 มิลลิกรัมสมมูลของกรดแกลลิกต่อน้ำหนักสารสกัด 1 กรัม 25.48±2.02 มิลลิกรัมสมมูลของเคทาชินต่อน้ำหนักสารสกัด 1 กรัม 11.16±0.04 ไมโครกรัมต่อน้ำหนักสารสกัด 1 กรัม และ 4.54±0.08 ไมโครกรัมต่อน้ำหนักสารสกัด 1 กรัม ตามลำดับ ค่า IC50 จากการทดสอบด้วยวิธี DPPH และ ABTS เท่ากับ 117.50±1.22 และ 36.14±1.53 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตร ตามลำดับ การศึกษาครั้งนี้แสดงให้เห็นว่าสารสกัดใบกะเปียดเครือมีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ โดยมีสารออกฤทธิ์ในกลุ่มฟีนอลิก และฟลาโวนอยด์ ซึ่งแสดงให้เห็นศักยภาพของสารสกัดใบกะเปียดเครือในการนำไปพัฒนาเป็นยาต่อไป

Article Details

รูปแบบการอ้างอิง
[1]
ปะดุกา ห., สันทัดเลขา ป., คีรีคช ท., และ กุลวรรัตต์ น., “การวิเคราะห์ปริมาณสารสำคัญและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดใบกะเปียดเครือ”, RMUTP Sci J, ปี 15, ฉบับที่ 2, น. 118–129, ธ.ค. 2021.
ประเภทบทความ
บทความวิจัย (Research Articles)

เอกสารอ้างอิง

S. Noppamas. Diagnostic Pharmacy Medicines and natural products, 3rd ed. Bangkok: Sengtian printing, 2011.

W. E. M. Lands and A. M. Hanel, “Phenolic anticyclooxygenase agents in antiinflammatory and analgesic therapy,” Prostaglandins, vol. 24, no. 2, pp. 271-277, 1982.

F. P. R. de Morais, T. B. Pessato, E. Rodrigues, L. Peixoto Mallmann, L. R. B. Mariutti and F. M. Netto, “Whey protein and phenolic compound complexation: Effects on antioxidant capacity before and after in vitro digestion,” Food Research International, vol. 133, p. 109104, 2020.

F. Pope, “Phenol in enteric fever.1,” The Lancet, vol. 133, no. 3424, pp. 728-729, 1889.

S. S. El-Hawary, M. F. Yousif, A. A. Abdel Motaal and L. M. Abd-Hameed, “Bioactivities, phenolic compounds and in-vitro propagation of Lippia citriodora Kunth cultivated in Egypt,” Bulletin of Faculty of Pharmacy, Cairo University, vol. 50, no. 1, pp. 1-6, 2012.

H.-J. Zhi, H.-Y. Zhu, Y.-Y. Zhang, Y. Lu, H. Li and D.-F. Chen, “In vivo effect of quantified flavonoids-enriched extract of Scutellaria baicalensis root on acute lung injury induced by influenza A virus,” Phytomedicine, vol. 57, pp. 105-116, 2019.

S. Wrotek, J. Sobocinska, H.M. Kozłowski, M. Pawlikowska, T. Jedrzejewski and A. Dzialuk, “New Insights into the Role of Glutathione in the Mechanism of Fever,” International Journal of Molecular Sciences, vol. 21, no. 4, 2020.

T. Y. Kao, W. T. Huang, C. P. Chang and M. T. Lin, “Aspirin may exert its antipyresis by inhibiting the N-methyl-D-aspartate receptor-dependent hydroxyl radical pathways in the hypothalamus,” Journal of Pharmacological Sciences, vol. 103, no. 3, pp. 293-298, 2007.

S. Jutharat, “Phytochemical screening and biological activities of Dolichandrone serrulata,” M.S. thesis, Dept. M.Sc., BUU Univ., Chon Buri, Thailand, 2016.

L. Charan, “Systematics and conservation of the genera Premna L. and Callicarpa L. (LAMIACEAE) in Thailand and Indo-China,” Ph.D. dissertation, Dept. Biology. KUU Univ., Khon kaen, Thailand, 2008.

R. Dianita and I. Jantan, “Ethnomedicinal uses, phytochemistry and pharmacological aspects of the genus Premna: a review,” Pharm Biol, vol. 55, no. 1, pp. 1715-1739, 2017.

R. Dianita and I. Jantan, “Inhibition of Human Platelet Aggregation and Low-Density Lipoprotein Oxidation by Premna foetida Extract and Its Major Compounds,” Molecules, vol. 24, no. 8, 2019.

M. C. Hsieh, Y. J. Shen, Y. H. Kuo and L. S. Hwang, “Antioxidative activity and active components of longan (Dimocarpus longan Lour.) flower extracts,” Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 56, no. 16, pp. 7010-7016, 2008.

J. Zhishen, T. Mengcheng and W. Jianming, “The determination of flavonoid contents in mulberry and their scavenging effects on superoxide radicals,” Food Chemistry, vol. 64, no. 4, pp. 555-559, 1999.

W. Chanthasri, N. Puangkeaw, N. Kunworarath, P. Jaisamut, S. Limsuwan, K. Maneenoon, P. Choochana and S. Chusri, “Antioxidant capacities and total phenolic contents of 20 polyherbal remedies used as tonics by folk healers in Phatthalung and Songkhla provinces, Thailand,” BMC Complementary and Alternative Medicine, vol. 18, no. 1, p. 73, 2018.

R. Re, N. Pellegrini, A. Proteggente, A. Pannala, M. Yang and C. Rice-Evans, “Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay,” Free Radical Biology and Medicine, vol. 26, no. 9, pp. 1231-1237, 1999.

M. Kurzawa, A. Filipiak-Szok, E. Kłodzinska and E. Szłyk, “Determination of phytochemicals, antioxidant activity and total phenolic content in Andrographis paniculata using chromatographic methods,” Journal of Chromatography B, vol. 995-996, pp. 101-106, 2015.

J. Nisa, “Phytochemical screening and biologycal activities of Dendrobium spp.,” M.S. thesis, Dept. M.Sc. (Chemical education), BUU Univ., Chon Buri, Thailand, 2016.

A. S. Oliveira, L. M. Cercato, M. T. D. S. Souza, A. J. O. Melo, B. D.. S. Lima, M. C. Duarte, A. S. Araujo, A. M. O. Silva and E. A. Camargo, “The ethanol extract of Leonurus sibiricus L. induces antioxidant, antinociceptive and topical anti-inflammatory effects,” Journal of Ethnopharmacology, vol. 206, pp. 144-151, 2017.

D. Tang, K. Chen, L. Huang and J. Li, “Pharmacokinetic properties and drug interactions of apigenin, a natural flavone,” Expert Opinion on Drug Metabolism and Toxicology, vol. 13, no. 3, pp. 323-330, 2017.

P.-Y. Jiang, X.-J. Zhu, Y.-N. Zhang, F.-F. Zhou and X.-F. Yang, “Protective effects of apigenin on LPS-induced endometritis via activating Nrf2 signaling pathway,” Microbial Pathogenesis, vol. 123, pp.

-143, 2018.

M. M. G. Pinheiro, F. Boylan and P. D. Fernandes, “Antinociceptive effect of the Orbignya speciosa Mart. (Babassu) leaves: Evidence for the involvement of apigenin,” Life Sciences, vol. 91, no. 9, pp. 293-300, 2012.

M. Shields, “Chapter 14 - Chemotherapeutics,” in Pharmacognosy, S. Badal and R. Delgoda, Eds. Boston: Academic Press, 2017, pp.

-313.

K. P. Devi, D. S. Malar, S. F. Nabavi, A. Sureda, J. Xiao, S. M. Nabavi and M. Daglia, “Kaempferol and inflammation: from chemistry to medicine,” Pharmacological Research, vol. 99, pp. 1-10, 2015.

A. M. Potshangbam, R. S. Rathore, and P. Nongdam, “Discovery of sulfone-resistant dihydropteroate synthase (DHPS) as a target enzyme for kaempferol, a natural flavanoid,” Heliyon, vol. 6, no. 2, p. e03378, 2020.

J. E. T. do Nascimento, S. M. de Morais, D. S. de Lisboa, M. D. O. Sousa, S. A. A. R. Santos, F. E. A. Magalhaes and A. R. Campos, “The orofacial antinociceptive effect of Kaempferol-3-O-rutinoside, isolated from the plant Ouratea fieldingiana, on adult zebrafish (Danio rerio),” Biomedicine and Pharmacotherapy, vol. 107, pp. 1030-1036, 2018.

Ph. Burun, “Free radicals, antioxidants and antioxidant activity determination,” Thai Journal of Science and Technology, vol. 21, no. 3, pp. 275-286, 2013.

R. Apak, M. Ozyurek, K. Guclu and E. Capanoglu, “Antioxidant activity/capacity measurement. 1. Classification, physioche-

mical principles, mechanisms, and electron transfer (ET)-based assays,” Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 64, no. 5 , pp. 997-1027, 2016.

R. Apak, M. Ozyurek, K. Guclu and E. Capanoglu, “Antioxidant activity/capacity measurement. 2. Hydrogen atom transfer (HAT)-based, mixed-mode (electron transfer (ET)/HAT), and lipid peroxidation assays,” Journal of Agricultural and Food Chemistry, vol. 64, no. 5, pp. 102, 2016.

W. T. Huang, M. T. Lin and C. P. Chang, “An NMDA receptor-dependent hydroxyl radical pathway in the rabbit hypothalamus may mediate lipopolysaccharide fever,” Neuropharmacology, vol. 50, no. 4, pp. 504-511, 2006.