การศึกษาอุณหภูมิการอบแห้งรกสุกรและการสกัดโปรตีนและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาอุณหภูมิที่เหมาะสมในการอบแห้งรกสุกร และสารละลายที่เหมาะสมในการสกัดโปรตีนและสารออกฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในรกสุกร โดยอุณหภูมิที่ใช้ในการอบแห้งแบ่งเป็น 3 ระดับ ได้แก่ 50, 60 และ 70 องศาเซลเซียส และสารละลายที่ใช้ศึกษาในการสกัดโปรตีนและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระจากรกสุกร 3 ชนิด ได้แก่ น้ำปราศจากไอออน สารละลายเกลือฟอสเฟสบัฟเฟอร์ และเฮกเซน จากนั้นวัดปริมาณโปรตีนและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในสารสกัดจากรกสุกรสดและอบแห้ง พบว่าสภาวะที่เหมาะสมในการอบรกสุกร คืออุณหภูมิ 70องศาเซลเซียส นาน 4 ชั่วโมง เนื่องจากใช้เวลาในการอบน้อยที่สุดที่ทำให้ปริมาณความชื้นในรกสุกรลดต่ำสุดจนคงที่ด้วยความชื้นสุดท้ายร้อยละ 3.80±3.36 ฐานแห้ง และผลการวิเคราะห์พบว่าไม่พบโปรตีนและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในสารสกัดจากรกสดและอบแห้งที่สกัดด้วยเฮกเซน แต่พบว่ามีโปรตีนในรกสุกรสดและอบแห้งที่สกัดด้วยน้ำปราศจากไอออนและเกลือฟอสเฟสบัฟเฟอร์ ในปริมาณ 0.05±0.01 และ 0.04±0.01 มิลลิกรัมของโบวินซีรัมอัลบูมินต่อ 100 มิลลิกรัมของรกสด ตามลำดับสำหรับรกสุกรสด และ 0.12±0.03 และ 0.07±0.02 มิลลิกรัม ของโบวินซีรัมอัลบูมินต่อ 100 มิลลิกรัมของรกสด ตามลำดับสำหรับรกสุกรแห้ง และพบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในสารสกัดจากรกสุกรสดและอบแห้งที่สกัดด้วยน้ำปราศจากไอออน และเกลือฟอสเฟสบัฟเฟอร์ในระดับ 1.13±0.03 และ 1.29±0.04 มิลลิกรัมของโทรลอกซ์ต่อ 100 มิลลิกรัมของรกสด ตามลำดับสำหรับรกสุกรสด และ 3.37±0.02 และ 3.59±0.01 มิลลิกรัมของโทรลอกซ์ต่อ 100 มิลลิกรัมของรกสด ตามลำดับสำหรับรกสุกรแห้ง
Article Details
เอกสารอ้างอิง
[2] W. Phuapradit, B. Chanrachakul, P. Thuvasethakul, S. Leelaphiwat, S. Sassanarakkit, and S. Chanworachaikul, “Nutrients and hormones in heat-dried human placenta,”Journal of the Medical Association of Thailand, vol. 83, no. 6, pp. 690-694, 2000.
[3] B. Y. Kim, T. G. Kim, W. Y. Kang, H. Baek, H. Y. Cheon and D. U. Kim, “Functional cosmetic effect of porcine placenta,” Korean Chemical Engineering Research, vol. 48, no. 3, pp. 327-331, Jun. 2010.
[4] C. Yoshikawa, F. Takano, Y. Ishigake, M. Okada, S. Kyo, N. Suzuki, K. Sugiura and K. Koike, “Effect of porcine placental extract on collagen production in human skin fibroblasts In Vitro,” Gynecol Obstet, vol. 3, no. 6, pp. 1-4, Nov. 2013.
[5] W. Tang, M. Zhang and Z. Fang, “Optimization of ultrasound-assisted-extraction of porcine placenta water-soluble proteins and evaluation of the antioxidant activity,” Journal of Food Science and Technology, vol. 52, no. 7, pp. 4042-4053, Jul. 2015.
[6] D. W. Gu, M. J. Kim, M. G. Gwak, H. J. Cho and H. S. Lee, “A method for preparing pig placental extract to use as a feed additive and use thereof,” Patent WO2008002005A1, Jan. 2008.
[7] O. Ruksounjik, S. Klaynongsruang, C. Hahnvajanawong and W. Khunkitti, “Bioactivities of goat placenta hydrolysates,” Isan Journal of
Pharmaceutical Sciences, vol. 12, no. 3, pp. 61-71, 2016.
[8] A. Jash et al., “Topical application of porcine placenta extract inhibits the progression of experimental contact hypersensitivity,” Journal of
Ethnopharmacology, vol. 133, no. 2, pp. 654-662, Jan. 2011.
[9] S. H Park, J. H. Kim, S. G. Min, Y. J. Jo and J. Y. Chun, “Effects of Ethanol Addition on the Efficiency of Subcritical Water Extraction of Proteins and Amino Acids from Porcine Placenta,” Korean journal for food science of animal resources, vol. 35, no. 2, pp. 265-271, Apr. 2015.
[10] N. Mahey, D. Arwapark and D. Pichairatana, “Optimization of high protein hydrolysate extraction from hard clam (Meretrix casta) using response surface methodology,” KKU science journal, vol. 43, no. 3, pp. 425-438, 2015.
[11] M. W. Noall, H. A. Salhanick, G. M. Neher and M. X. Zarrow, “Method for the isolation of progesterone from human placentae,” Journal of Biological Chemistry, vol. 201, pp. 321-328, 1953.
[12] O. H. Lowry, N. J. Rosebrough, A. L. Farr and R. J. Randall, “Protein measurement with the folin phenol reagent,” Journal of Biological Chemistry, vol. 193, no. 1, pp. 265-275, Nov. 1951.
[13] R. Re, N. Pellegrini, A. Proteggente, A. Pannala, M. Yang and C. R. Evans, “Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation
decolorization assay,” Free Radical Biology and Medicine, vol. 26, pp. 1231-1237, May 1999.
[14] A. Jang, C. Jo, I. J. Kim and M. Lee, “Nutritional quality of dried pig placenta,” Journal of Food Science and Nutrition, vol. 12, pp. 89-94, Jun. 2007.
[15] J. Kunwisana, S. Prachayawarakorn and S. Soponronnarith, “Effect of drying temperature on volatile compounds and physical qualities of banana slices,” KMUTT Research and Development Journal, vol. 30, no. 4, pp. 611-621, 2007.
[16] S. Tirawanichakul, S. Lamaepae and Y. Tirawanichakul, “Combined infrared/ microwave and hot air drying for jackfruit: Kinetics quality sensory analysis,” Burapha Science Journal, vol. 17, no. 1, pp. 117-129, Jan. 2012.
[17] S. Tirawanichakul, W. Naphatthalung and Y. Tirawanichakul, “Drying strategy of shrimp using hot air convection and hybrid infrared radiation/hot air convection,” Walailak Journal of Science and Technology, vol. 55, no. 1, pp. 77-100, Jan. 2008.
[18] C. Supakorn and S. Thongpassno, “Effect of Dried Porcine Placenta on Growth Performance in Post-Weaning Pigs,” Walailak Journal of Science and Technology, vol. 8, no. 2, pp. 167-173, Jun. 2011.
[19] A. Sae-Khow, S. Tirawanichakul and Y. Tirawanichakul, Effect of drying with heat convection and heat radiation on drying kinetics and quality aspect of black pepper,” Burapha Science Journal, vol. 18, no. 1, pp. 166-180, Jan. 2013.
