การคัดแยกแบคทีเรียส่งเสริมการเจริญเติบโตของพืชจากดินบริเวณรอบ รากต้นกระดุมทองเลื้อย (Wedelia trilobata (L.) A.S. Hitchcock)
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อคัดแยกแบคทีเรียที่มีคุณสมบัติส่งเสริมการเจริญเติบโตของพืชจากต้นกระดุมทองเลื้อย และทดสอบคุณสมบัติเบื้องต้นในการเป็นแบคทีเรียส่งเสริมการเจริญเติบโตของพืช โดยแยกแบคทีเรียได้ทั้งหมด 47 ไอโซเลต เป็นแบคทีเรียแกรมบวก 26 ไอโซเลต แบคทีเรียแกรมลบ 18 ไอโซเลต และแอคติโนแบคทีเรีย 3 ไอโซเลต การทดสอบคุณสมบัติการเป็นแบคทีเรียส่งเสริมการเจริญเติบโตของพืช ประกอบด้วย ทดสอบการตรึงไนโตรเจน การสร้างสารซิเดอร์โรฟอร์ การละลายฟอสเฟต และการสร้างกรดอินโดล-3-แอซิติก จากนั้นทำการคัดเลือกมา 8 ไอโซเลต คือ BWTM1_MSU, BWTM2_MSU, BWTM5_MSU, BWTM6_MSU, BWWM6_MSU, BWWM8_MSU, BWWM9_MSU และ BWWM16_MSU เพื่อศึกษาคุณสมบัติการครอบครองบริเวณรากและการส่งเสริมการเจริญเติบโตของพืช ผลการทดลองพบว่า ไอโซเลต BWTM5_MSU สามารถส่งเสริมการเจริญเติบโตของพืชได้ชัดเจน โดยมีร้อยละของการงอก มากที่สุดที่ 63.33 ความยาวรากและต้นข้าวอยู่ในระดับที่สูง คือ 6.11 เซนติเมตร และ 3.89 เซนติเมตร ตามลำดับ ส่งผลให้น้ำหนักของรากและลำต้นสูงถึง 9.56 มิลลิกรัม และ 11.33 มิลลิกรัม ตามลำดับ อีกทั้งยังมีความสัมพันธ์กับปริมาณการผลิตกรดอินโดล-3-แอซิติกที่มีมากที่สุดถึง 421.29 µg/ml และยังสามารถแยกเชื้อจากบริเวณผิวรากและบริเวณดินรอบรากพืชได้ 9.67x106เซลล์ต่อมิลลิลิตร และ 1.64x1010เซลล์ต่อมิลลิลิตร ตามลำดับหลังจากปลูกข้าว 7 วัน
Article Details
References
[2] A. Kumar, V. Dana, M.K. Singh, P.P. Ratap, S.S.D. Kumar, S.P. Kumar, S. Kapil and D. Pandey, “Isolation of plant growth promoting rhizobacteria and their impact on growth and curcumin content in Curcuma longa L.,” Biocatalysis and Agricultural Biotechnology, vol. 8, pp.1 – 7, Oct. 2016.
[3] D. Thakur, M. Kaur and A. Mishra, “Isolation and screening of plant growth promoting Bacillus spp. and Pseudomonas spp. and their effect on growth, rhizospheric population and phosphorous concentration of Aloe vera,” Journal of Medicinal Plants Studies, vol. 5, no. 1, pp.187 – 192, Jan. 2017.
[4] J.P. Dubey and A.N. Hamir, “Experimental toxoplasmosis in budgerigars (Melopsittacus undulates),” Journal of Parasitol, vol. 88, no.3, pp. 514– 519, Jan. 2002.
[5] U.P. Shrivastava and A. Kumar, “A simple and rapid plate assay for the screening of indole-3-Acetic acid (IAA) producing microorganisms,” International Journal of Applied Biology and Pharmaceutical Technology, vol.2, no.1, pp. 120-123, Jan. 2011.
[6] E. Bharucha, J.H. Pemberton and G.L. Richard, “American gastroenterological association technical review on constipation,” Gastroenterology, vol.144, no. 1, pp. 218-238, Jan. 2013.
[7] K. Soderberg, A. Probanza, A. Jumpponen and E. Baath, “The microbial community in the rhizosphere determined by community-level physiologicalprofiles (CLPP) and direct soil and cfu-PLFA technique, Applied Soil Ecology, vol. 25, no. 2, pp. 135–145, Feb. 2004.
[8] R. Dick, Lecture on Soil Bacteria in Soil Microbiology, The Ohio State University School of Environment and Natural Resources, Columbus, Ohio, 2009.
[9] S. Bakthavatchalu and S. Shivakumar, “Siderophore production by Pseudomonas aeruginosa FP6, a biocontrol strain for Rhizoctonia solani and Colletotrichum gloeosporioides causing diseases in chilli,” Agriculture and Natural Resources, vol. 50, no. 4, pp. 250-256, July 2016.
[10] K. Kanimozhi and A. Panneerselvam, “Studies on isolation and nitrogen fixation ability of Azospirillum spp. isolated from Thanjavur district.,” Pelagia Research Library, vol.1, no.3, pp. 138- 145, 2010.
[11] T. Fang, D. Yangin, Z. Hui, Y. Liangtog and D. Binghai, “Genetic diversity of siderophore-producing bacteria of tobacco rhizosphere,” Brazilian Journal of Microbiology, vol. 40, no.2 pp. 276-284, Apr.-Jun. 2009.
[12] A. Grobelak, A. Napora and M. Kacprzak, “Using plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) to improve plant Growth. Ecological Engineering, vol. 8, no. 4, pp. 22 – 28, Nov. 2015.