ทอรีนและฮีสตามีนในตัวอย่างปลาทะเล และปลาน้ำจืด (TAURINE AND HISTAMINE IN SEAFISH AND FRESHWATER FISH SAMPLES)
คำสำคัญ:
Siamese Elite, King Taksin the Greatบทคัดย่อ
งานวิจัยนี้มีจุดประสงค์เพื่อตรวจวิเคราะห์ปริมาณทอรีนและฮีสตามีนแบบพร้อมกันในตัวอย่างปลา ได้แก่ ปลาทะเล และปลาน้ำจืดของประเทศไทยด้วยเทคนิคโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูง โดยวิธีการเตรียมสารอนุพันธ์ของทอรีนและฮีสตามีนด้วยออร์โท-พทาลอัลดีไฮด์ ทั้งนี้ได้ศึกษาสภาวะที่เหมาะสมในการวิเคราะห์ พบว่าสภาวะที่เหมาะสมจะใช้วัฏภาคเคลื่อนที่เป็นสารละลายผสมของฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 4.8 เข้มข้น 0.02 โมลาร์ต่ออะซิโตไนไตรล์ อัตราส่วน 65 : 35 โดยปริมาตร ควบคุมอัตราการไหล 0.8 มิลลิลิตรต่อนาที และตรวจวัดด้วยฟลูออเรสเซนต์ที่ความยาวคลื่นของการกระตุ้นและความยาวคลื่นของการเปล่งแสง 333 และ 451 นาโนเมตร ตามลำดับ โดยสามารถวิเคราะห์ทอรีนและฮีสตามีนได้พร้อมกันภายในเวลา 10 นาที ค่าระยะเวลารีเทนชันเท่ากับ 5.415 และ 8.483 นาที ตามลำดับ ผลของการศึกษาประสิทธิภาพของวิธีการวิเคราะห์พบว่า กราฟมาตรฐานของทอรีนและฮีสตามีนมีความเป็นเส้นตรงอยู่ในช่วงความเข้มข้น 0.0005 ถึง 10 และ 0.03 ถึง 10 มิลลิกรัมต่อลิตร ตามลำดับ ให้ค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ (R2) ของทอรีนและฮีสตามีน เท่ากับ 0.9975 และ 0.9980 ตามลำดับ มีค่าขีดจำกัดต่ำสุดที่สามารถตรวจวัดได้ (LOD) และค่าขีดจำกัดต่ำสุดที่สามารถตรวจวิเคราะห์ปริมาณได้ (LOQ) ของทอรีน เท่ากับ 0.0001 และ 0.0005 มิลลิกรัมต่อลิตร ตามลำดับ สำหรับฮีสตามีนมีค่า LOD และ LOQ เท่ากับ 0.01 และ 0.03 มิลลิกรัมต่อลิตร ตามลำดับ แสดงให้เห็นว่าวิธีวิเคราะห์นี้สามารถแยกทอรีนและฮีสตามีนได้อย่างมีประสิทธิภาพ และสามารถนำไปวิเคราะห์ปริมาณทอรีน และฮีสตามีนในตัวอย่างปลาน้ำจืดและปลาทะเลได้ โดยตรวจพบปริมาณทอรีนในตัวอย่างปลาอยู่ในช่วง 490.81±1.7 ถึง 1721.92±1.9 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม และมีปริมาณฮีสตามีนในช่วง 6.78±0.2 ถึง 19.07±1.4 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม นอกจากนี้ได้ศึกษาปัจจัยวิธีการปรุงอาหารด้วยวิธีต้ม นึ่ง และทอดในตัวอย่างปลา พบว่าวิธีการปรุงอาหารส่งผลต่อปริมาณทอรีนและฮีสตามีนในตัวอย่าง
Downloads
เอกสารอ้างอิง
samples. Journal of Chromatography B. 781: 251-267.
[2] ประสงค์ เทียนบุญ. (2547). ทอรีน. วารสารโภชนะบำบัด. 15(1): 23-32.
[3] Valeria, F.; & Claudia, L. (1998). Histamine and histidine determination in tuna fish samples using
high-performance liquid chromatography Derivatization with o-phthalaldehyde and fluorescence
detection or UV detection of ‘‘free’’ species. Journal of Chromatography A. 809: 241–245.
[4] ยุพิน สังวรินทะ; และคณะ. (2537). เภสัชวิทยา. กรุงเทพฯ: ภาควิชาเภสัชวิทยา คณะวิทยาศาสตร์
มหาวิทยาลัยมหิดล.
[5] จิรวัฒน์ ยงสวัสดิกุล; และคณะ. (2546). ปัจจัยที่มีผลต่อปริมาณฮีสตามีนในกระบวนการผลิตน้ำปลา.
ใน เอกสารรายงานการวิจัย. มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีสุรนารี.
[6] Food and Drug Administration, USA. (1995). Decomposition and histamine-raw frozen tuna and
mahi–mahi; canned tuna; and related species; availability of revised compliance policy guide.
Federal Registration. 60: 39754–39756.
[7] Pappa-Louisi, A.; Sotiropoulos, S.; & Balkat zopoulou, P. (2008). Mobile phase pH, column
temperature, and eluent flow rate effects on separation and fluorescence electrochemical detection
of OPA derivatives of amino acids in reversed-phase liquid chromatography. Journal of Liquid
Chromatography & Related Technologies. 31: 1434-1447.
[8] Silva, C.C.G.; Da Ponte, D.J.B.; & Enes Dapkevicius, M.L.N. (1998). Storage temperature effect on
histamine formation in big eye tuna and skipjack. Journal of Food Science. 63: 644-647.
[9] World Health Organization & Food and Agriculture Organization of the United Nations. (2012).
Joint FAO/WHO expert meeting on the public health risks of histamine and other biogenic amines
from fish and fishery products: meeting report. Rome Italy: FAO headquarters.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
รูปแบบการอ้างอิง
ฉบับ
ประเภทบทความ
สัญญาอนุญาต
วารสารมหาวิทยาลัยศรีนครินทรวิโรฒ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี อยู่ภายใต้การอนุญาต Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivs 4.0 International (CC-BY-NC-ND 4.0) เว้นแต่จะระบุไว้เป็นอย่างอื่น โปรดอ่านหน้านโยบายของวารสารสำหรับข้อมูลเพิ่มเติมเกี่ยวกับการเข้าถึงแบบเปิด ลิขสิทธิ์ และการอนุญาต
