ปริมาณสารประกอบฟีนอลทั้งหมดและปริมาณแกลลิกในผลมะขามป้อมสด และผลมะขามป้อมดองจากห้าแหล่งสายพันธุ์ (TOTAL PHENOLIC AND GALLIC ACID CONTENTS IN FRESH AND PRESERVED EMBLICA OFFICINALIS GAERTN FRUITS FROM FIVE DIFFERENT VARIETIES)

ผู้แต่ง

  • ขนิษฐา ชวนะนรเศรษฐ์ สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)
  • อมรรัษฏร์ พิกุลทอง สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)
  • มณีรัตน์ มีพลอย สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)
  • ไมตรี มัณยานนท์ สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)
  • นลินาสน์ จิตร์พรหม สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)
  • ปนิดา บรรจงสินศิริ สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)
  • ชลธิชา นิวาสประกฤติ สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)
  • เนาวพันธุ์ หนูจุ้ย สถาบันวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งประเทศไทย (วว.)

คำสำคัญ:

มะขามป้อม, วงศ์ยูฟอร์เบียซี, กรดแกลลิก, สารประกอบฟีนอลทั้งหมด, การวิเคราะห์ด้วยเครื่องมือ, เฮชพีแอลซี

บทคัดย่อ

          ประเทศแถบเอเชียมีการใช้มะขามป้อมในทางยารักษาโรคหลายชนิดในยาแผนโบราณ ในประเทศไทยใช้เพื่อบำรุงสุขภาพและเป็นหนึ่งในตำรับยาอายุรเวทที่มีรายงานในการต้านมะเร็ง กรดแกลลิคเป็นสารสำคัญที่มีสรรพคุณต้านการเกิดออกซิเดชั่นที่ใช้แพร่หลายในอุตสาหกรรมเภสัช ดังนั้นงานศึกษานี้วัตถุประสงค์เพื่อวิเคราะห์ปริมาณกรดแกลลิกและสารประกอบฟีนอลทั้งหมดในผลมะขามป้อมสดและดองด้วยสารละลายเกลือ 10% และ 15% จากห้าสายพันธุ์โดยมีระยะการเก็บรักษาสามเดือน มะขามป้อมห้าสายพันธุ์ ได้แก่ สายพันธุ์ KR-1, KR-2, KR-3, KR-4 and LTK-3 วิธีการวิจัยเริ่มจากการแกะเนื้อออกจากเมล็ดมะขามป้อม อบแห้งและบดละเอียดตามลำดับ จากนั้นสกัดผงมะขามป้อมโดยใช้เอธานอลที่มีความปริสุทธิ์สูงและวิเคราะห์ปริมาณกรดแกลลิกและสารประกอบฟีนอลทั้งหมดในสารสกัดด้วยเครื่องมือ HPLC ผลการวิเคราะห์พบว่าปริมาณกรดแกลลิกน้อยที่สุดในสายพันธุ์ KR-4 และมากที่สุดในสายพันธุ์ LTK-3 นอกจากนี้ปริมาณสารประกอบฟีนอลทั้งหมดเพิ่มขึ้นจากสัปดาห์ที่ 0 ถึงสัปดาห์ที่ 12 การวิจัยจะดำเนินการในทางด้านผลิตภัณฑ์อาหาร การศึกษาฤทธิ์ทางยาและเครื่องสำอางจากมะขามป้อมสายพันธุ์ LTK-3 ต่อไป

Downloads

Download data is not yet available.

เอกสารอ้างอิง

[1] Jan, R., Pandey, R., Mahant, R.N., and Rathore, D.S. (2015). A review on medicinal importance of Emblica officinalis. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Reseacrh (IJPSR). 6, 72-84.
[2] Maurya, U., and Srivastava, S. (2011). Traditional Indian herbal medicine used as antipyretic, antiulcer, anti-diabetic and anticancer: A review. International Journal of Research in Pharmaceutical Chemistry. 1, 1152-1159.
[3] Wongnoppavich, A., Jaijol, K., and Sireeratawong, S. (2009). Triphala The Thai traditional herbal formulation for cancer treatment. Songkla-nakari J.Sci.Technol. 31, 139-149.
[4] Srivasuki K.P. (2012). Nutritional and health care benefits of Amla. Journal of Pharmacognosy. 13,141-151.
[5] Zhang, L.Z., Zhao, W.H., Guo, Y.J., Tu, G.Z., Lin, S., and Xin, L.G. (2008). Studies on chemical constituents in fruits of Tibetan medicine Phyllanthus emblica. ZhongguoZhong Yao ZaZhi. 28, 940-943.
[6] Singh, E., Sharma, S., Pareek, A., Dwivedi, J., Yadav, S., and Sharma, S. (2011). Phytochemistry, traditional uses and cancer chemopreventive activity of Amla (Phyllanthus emblica): The Sustainer. J. of Applied Pharmaceutical Science. 2, 176-183.
[7] Sawant, L., Prabhakar, B., and Pandita, N. (2010). Quantitative HPLC analysis of ascorbic acid and gallic acid in Phyllanthus Emblica. Journal of Analytical & Bioanalytical Techniques. 1, 1-4. DOI:10.4172/2155-9872.1000111
[8] Rakesh, A.S.S., and Moond, S.K. (2001). Processing products of aonla. Processed Food Industry.7, 20-23.
[9] Bhattacherjee, A.K., Dikshit, A., Kumar, S., and Tandon, D. (2012). Quality of aonla juice as affected by storage temperature. Beverage and Food World. 39, 54-56.
[10] Ruenroengklin, N., Zhong, J., Duan, X, Yang, B. Li, J., and Jiang, Y. (2008). Effects of various temperaures and pH values on the extraction yield of phenolics from Litchi fruit pericarp tissue and the antioxidant activity of the extracted anthocyanins. Int. J. Mol. Sci. 9, 1333-1341.
11] Reblova, Z. (2012). Effect of temperature on the antioxidant activity of phenolic acids. Czech J. Food Sci. 30, 171-177.
[12] Moldovan, B., and David, L. (2014). Influence of temperature and preserving agents on the stability of Cornelian cherries anthocyanins. Molecules. 19, 8177-8188.
[13] Barbosa, F.S., Leite, G.L.D., Martins, E.R.D., Avila, V.A., and Cerqueira, V.M. (2013). Medicinal plant extracts on the control of Diabrotica speciosa (Coleoptera Chrysomelidae). Rev. Bras. PI. Med. Botucatu. 15, 142-149.
[14] Nasr, C.B., Ayed, N., and Metche, M. (1996). Quantitative determination of the polyphenolic content of pomegranate peel. Zeitschrift fur Lebensmittel-Untersuchung und-Forschung. 203, 374-378.
[15] Govindarajan, R., Singh, D.P., and Rawat, A.K.S. (2008). Validated reversed-phase column high performance liquid chromatographic method for separation and quantification of polyphenolics and furocoumarics in herbal drugs. Journal of AOAC International. 91, 1020-1024.
[16] McQuate, R.S., Kraska, and R.C., Bidlack, W.R. (2009) Emblica officinalis extract-CAPROS foodusage conditions for general recognition of safety. Gras Assessment. 1-136.
[17] Luo, Q., Zeng, S., Shu, Y., Fu, Z., Zhao, H., and Su, S. (2018). A novel green process for tannic acid hydrolysis using an internally sulfonated hollow polystyrene sphere as catalyst. RSC Adv. 8, 17151-17158.
[18] Ossipova, V., Salminen, J.-P., Ossipova, S., Haukioja, E., and Pihaja, K. (2003). Gallic acid and hydrolysable tannins are formed in birch leaves from an intermediate compound of the shikimate pathway. Biochem. System. Eco. 31, 3-16.
[19] Belur, P.D., and Mugeraya, G. (2001). Microbial production of tannase: the state of art. Research Journal of Microbiology. 6, 25-40.
[20] Reddy, B.S., and Rathod, V. (2012). Gallic acid production & tannase activity of Penicilium purpurogenum stoll employing agro beased wastes through solid state fermentation: Influence of pH and temperature. Asian Journal of Biochemical and Pharmaceutical Research. 2, 59-62.
[21] Shete, H.G., and Chitanand, M.P. (2015). Bioconversion of naturally occurring tannins into a value added pharmaceutical intermediate gallic acid a new approach. Int. Curr. Microb. Appl. Sci. 4, 597-604.
[22] Bourgou, S., Bettaieb, I., Hamrouni, I., and Marzouk, B. (2012). Effect of NaCl on fatty acids, phenolics and antioxidant activity of Nigella sativa organs. Acta Physiol. Plant. 34, 379-386.
[23] Zhang, Y., Tang, N., Huang, L., Tang, X., and Wang, K. (2018). Effect of salinity stress on plant growth, antioxidant capacity, gland trichrome density, and volatile exudates of Schizonepeta tenuiflia Briq. Int. J. Mol. Sci. 19, 252. DOI:10.3390/ijms19010252

ดาวน์โหลด

เผยแพร่แล้ว

2020-03-27

รูปแบบการอ้างอิง

ชวนะนรเศรษฐ์ ข. ., พิกุลทอง อ. ., มีพลอย ม. ., มัณยานนท์ ไ. . . ., จิตร์พรหม น. ., บรรจงสินศิริ ป. ., นิวาสประกฤติ ช. ., & หนูจุ้ย เ. . (2020). ปริมาณสารประกอบฟีนอลทั้งหมดและปริมาณแกลลิกในผลมะขามป้อมสด และผลมะขามป้อมดองจากห้าแหล่งสายพันธุ์ (TOTAL PHENOLIC AND GALLIC ACID CONTENTS IN FRESH AND PRESERVED EMBLICA OFFICINALIS GAERTN FRUITS FROM FIVE DIFFERENT VARIETIES). วารสารมหาวิทยาลัยศรีนครินทรวิโรฒ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 11(22, July-December), 13–22. สืบค้น จาก https://ph02.tci-thaijo.org/index.php/swujournal/article/view/240345