การตรวจหาสารพฤกษเคมีและฤทธิ์ต้านจุลินทรีย์ของสารสกัดเท้ายายม่อม (Tacca leontopetaloides (L.) Kuntze.) PHYSICOCHEMICAL AND ANTIMICROBIAL ACTIVITY OF THAO YAI MOM (TACCA LEONTOPETALOIDES (L.) KUNTZE.) EXTRACTS
คำสำคัญ:
เท้ายายม่อม, ฟีนอลิก, แทนนิน, ฟลาโวนอยด์, ฤทธิ์ยับยั้งจุลินทรีย์บทคัดย่อ
การตรวจสอบสารพฤกษเคมีเบื้องต้นของหัวเท้ายายม่อม พบว่าสารสกัดจากฟลาวร์ประกอบด้วยแอลคาลอยด์ ซาโพนิน ฟลาโวนอยด์ และแทนนิน โดยสารพฤกษเคมีทั้งหมดข้างต้นยกเว้นแอลคาลอยด์พบในสารสกัดจากเปลือกเช่นกัน การทดสอบเฟอร์ริกคลอไรด์ไม่สามารถตรวจพบสารประกอบฟีนอลิกจากสารสกัดทั้งสองส่วน การวิเคราะห์สารประกอบฟีนอกลิกและแทนนินทั้งหมดด้วยวิธี Folin-Ciocalteu colorimetric พบว่าสารสกัดจาก ฟลาวร์และเปลือกมีปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด 2.70 และ 8.11 มิลลิกรัมสมมูลกรดแกลลิก / กรัมน้ำหนักแห้ง ตามลำดับ และมีปริมาณแทนนินทั้งหมดเท่ากับ 2.62 และ 8.68 มิลลิกรัมสมมูลกรดแทนนิก / กรัมน้ำหนักแห้ง ตามลำดับ ขณะที่ปริมาณฟลาโวนอยด์ในสารสกัดจากเปลือกวิเคราะห์ได้ 20.79 มิลลิกรัมสมมูลเคอร์ซิทิน / น้ำหนักแห้ง ซึ่งสูงกว่าปริมาณฟลาโวนอยด์ในสารสกัดจากฟลาวร์ (0.79 มิลลิกรัมสมมูลเคอร์ซิทิน / น้ำหนักแห้ง) ถึง 26 เท่า สารสกัดจากเปลือกแสดงฤทธิ์ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์อย่างมีนัยสำคัญเมื่อทดสอบด้วยวิธี Broth dilution โดยสามารถยับยั้งการเจริญของ Candida lipolytica ได้ร้อยละ 99.70, Bacillus subtilis ร้อยละ 76.58, Enterococcus faecalis TISTR 379 ร้อยละ 72.79, Staphylococcus aureus ร้อยละ 69.23 และ Salmonella sp. ร้อยละ 56.92 แบคทีเรียแกรมลบตัวอื่น ได้แก่ Pseudomonas fluorescens TISTR 904 และ Escherichia coli มีความต้านทานต่อสารสกัดจากเปลือกมากกว่า Salmonella sp. สารสกัดจากฟลาวร์มีฤทธิ์ยับยั้งจุลินทรีย์ต่ำกว่าสารสกัดจากเปลือก โดยแสดงฤทธิ์ยับยั้งการเจริญของจุลินทรีย์อย่างมีนัยสำคัญต่อ C. lipolytica คิดเป็นร้อยละ 45.86 และ E. faecalis TISTR 379 คิดเป็นร้อยละ 13.55 การทดสอบ MIC พบว่า S. aureus ไวต่อสารสกัดจากเปลือกมากที่สุด เนื่องจากมีค่า MIC ต่ำที่สุด (12.5 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร) ตามด้วย E. faecalis TISTR 379 และ C. lipolytica (25 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร) และ B. subtilis (50 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร) ส่วนแบคทีเรียแกรมลบ Salmonella sp. มีความไวต่อสารสกัดน้อยที่สุด โดยมีค่า MIC สูงสุด (100 มิลลิกรัม / มิลลิลิตร) ผลการศึกษาแสดงให้เห็นว่าเท้ายายม่อมมีฤทธิ์ต้านจุลินทรีย์และอาจใช้เป็นสารสกัดจากธรรมชาติที่สามารถยับยั้บจุลินทรีย์ได้
Downloads
Download data is not yet available.
เอกสารอ้างอิง
[1] Thaman, R.R. (2016). Atoll Research Bulletin. Washington DC: Smithsonian Institution Scholarly Press.
[2] Bosha, J.A.; Anaga, A.O., & Asuzu, I.U. (2015, January). Chemical composition of the marc of a wild tropical plant Tacca involucrata (Schumach and Thonn, 1827). Food and Nutrition Sciences, 6(1), 135-140.
[3] Caddick, L.R.; Rudall, P.J.; Wilkin, P.; Hedderson, T.A.J., & Chase, M.W. (2002, March). Phylogenetics of Dioscoreales based on combined analyses of morphological and molecular data. Botanical Journal of the Linnean Society, 138(2), 123-144.
[4] Jagtap, S., & Satpute, R. (2014, January). Phytochemical screening and antioxidant activity of tuber extracts of Tacca pinnatifida. International Journal of Recent Trends in Science and Technology, 9(3), 389-396.
[5] Ubwa, S.T.; Anhwange, B.A., & Chia, J.T. (2011, October). Chemical analysis of Tacca leontopetaloides peels. American Journal of Food Technology, 6(10), 932-938.
[6] Kelmanson, J. E.; Jäger, A.K., & van Staden, J. (2000, March). Zulu medicinal plants with antibacterial activity. Journal of Ethnopharmacology, 69(3), 241-246.
[7] Sonibare, M.A., & Abegunde, R.B. (2012, March). In vitro antimicrobial and antioxidant analysis of Dioscorea dumetorum (Kunth) Pax and Dioscorea hirtiflora (Linn.) and their bioactive metabolites from Nigeria. Journal of Applied Biosciences, 51, 3583-3590.
[8] Farombi, E.O.; Britton, G., & Emerole, G.O. (2000, July). Evaluation of the antioxidant and partial characterisation of extracts from browned yam flour diet. Food Research International, 33(6), 493-499.
[9] Ndouyang, C.J.; Njintang, N.Y.; Facho, B.; Scher, J., & Mbofung, C.M.F. (2015, January). Effect of processing method on the antinutrient content of Tacca leontopetaloides (L.) Kuntze flour. British Journal of Applied Science & Technology, 5(3), 258-269.
[10] Godghate, A.; Sawant, R., & Sutar, A. (2012). Phytochemical analysis of ethanolic extract of roots of Carrisa carandus Linn. Rasayan Journal of Chemistry, 5(4), 456-459.
[11] Sonam, M.; Singh, R.P., & Pooja, S. (2017). Phytochemical Screening and TLC Profiling of Various Extracts of Reinwardtia indica. International Journal of Pharmacognosy and Phytochemical Research, 9(4), 523-527.
[12] Yi, B.; Hu, L.; Mei, W.; Zhou, K.; Wang, H.; Luo, Y.; Wei, X., & Dai, H. (2011, December). Antioxidant phenolic compounds of cassava (Manihot esculenta) from Hainan. Molecules, 16(12), 10157-10167.
[13] Mailoa, M.N.; Mahendradatta, M.; Laga, A., & Djide, N. (2014, January). Antimicrobial activities of tannins extract from guava leaves (Psidium guajava L.) on pathogens microbial. International Journal of Scientific & Technology Research, 3(1), 236-241.
[14] Li, Y.; Ma, D.; Sun, D.; Wang, C.; Zhang, J.; Xie, Y., & Guo, T. (2015, August). Total phenolic, flavonoid content, and antioxidant activity of flour, noodles, and steamed bread made from different colored wheat grains by three milling methods. The Crop Journal, 3(4), 328-334.
[15] Habila, J.D.; Bello, I.A.; Dzikwe, A.A.; Ladan, Z., & Sabiu, M. (2011). Comparative evaluation of phytochemicals, antioxidant and antimicrobial activity of four medicinal plants native to Northern Nigeria. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 5(5), 537-543.
[16] Hans-Walter, H., & Piechulla, B. (2011). Plant Biochemistry. 4th ed. San Diego: Academic Press.
[17] Trugo, L.C.; von Baer, D., & von Baer, E. (2003). Encyclopedia of Food Sciences and Nutrition. 2nd ed. Oxford: Academic Press.
[18] Borokini, I., & Ayodele, A. (2012, January). Phytochemical screening of Tacca Leontopetaloides (L.) Kuntze collected from four geographical locations in Nigeria. Indian Journal of Medical Biochemistry, 2(4), 97-102.
[19] Jagtap, S., & Satpute, R. (2015). Phytochemical screening, antioxidant, antimicrobial and quantitative multi-elemental analysis of Peristylus densus (Lindl.) Santapau and Kapadia. Journal of Academia and Industrial Research, 3(10), 511-519.
[20] Soloway, S., & Wilen, S.H. (1952, June). Improved ferric chloride test for phenols. Analytical Chemistry, 24(6), 979-983.
[21] MacWilliam, I.C., & Wenn, R.V. (1972, July-August). Interpretation of colour tests for polyphenols and melanoidins. Journal of The Institute of Brewing, 78(4), 309-309.
[22] Cowan, M. (1999). Plant products as antimicrobial agents. Clinical Microbiology Reviews, 12, 564- 582.
[23] Maddox, C.E.; Laur, L.M., & Tian, L. (2010, January). Antibacterial activity of phenolic compounds against the phytopathogen Xylella fastidiosa. Current Microbiology, 60(1), 53-58.
[24] Vu, Q.T.H.; Le, P.T.K.; Vo, H.P.H.; Nguyen, T.T., & Nguyen, T.K.M. (2017, September). Characteristics of Tacca leontopetaloides L. Kuntze collected from an Giang in Vietnam. AIP Conference Proceedings. Retrieved January 9, 2019, from https://www.researchgate.net/publication/319865480_Characteristics_of_Tacca_leontopetaloides_L_Kuntze_collected_from_An_Giang_in_Vietnam
[25] Ogbonna, A.I.; Adepoju, S.O.; Ogbonna, C.I.C.; Yakubu, T.; Itelima, J.U., & Dajin, V.Y. (2017, January). Root tuber of Tacca leontopetaloides L. (kunze) for food and nutritional security. Microbiology: Current Research, 1(1), 5-11.
[26] Moreno, S.; Scheyer, T.; Romano, C.S., & Vojnov, A.A. (2006, February). Antioxidant and antimicrobial activities of rosemary extracts linked to their polyphenol composition. Free Radical Research, 40(2), 223-231.
[27] Cetin-Karaca, H. (2011). Evaluation of natural antimicrobial phenolic compounds against foodborne pathogens. Thesis, M.S. (College of Agriculture). Kentucky: Graduate school University of Kentucky.
[28] Wu, Y; Bai, J,: Zhong, K.; Huang, Y.; Qi, H.; Jiang, Y., & Gao, H. (2016). Antibacterial activity and membrane-disruptive mechanism of 3-p-trans-coumaroyl-2-hydroxyquinic acid, a novel phenolic compound from pine needles of cedrus deodara, against Staphylococcus aureus. Molecules, 21,
1-12.
[29] Latté, K.P., & Kolodziej, H. (2000). Antifungal effects of hydrolysable tannins and related compounds on dermatophytes, mould fungi and yeasts. Zeitschrift fur Naturforschung C, 55(5-6), 467-72.
[30] Teodoro, G.R.; Ellepola, K.; Seneviratne, C.J., & Koga-Ito, C.Y. (2015). Potential use of phenolic acids as anti-candida agents: a review. Frontiers in Microbiology, 6, 1-10.
[31] Poonia, S.; Singh, T.S., & Tsering, D.C. (2014, July). Antibiotic Susceptibility Profile of bacteria isolated from natural sources of water from rural areas of east Sikkim. Indian Journal of Community Medicine, 39(3), 156-160.
[32] Adeosun, O.M.; Arotupin, D.J.; Toba, O.A., & Adebayo, A.A. (2016, January-February). Antibacterial activities and phytochemical properties of extracts of Dioscorea bulbifera Linn (Air Potatoe) tubers and peels against some pathogenic bacteria. The Journal of Phytopharmacology, 5(1), 20-26.
[33] Akiyama, H.; Fujii, K.; Yamasaki, O.; Oono, T., & Iwatsuki, K. (2001, October). Antibacterial action of several tannins against Staphylococcus aureus. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 48(4), 487-491.
[34] Amarowicz, R.; Dykes, G.A., & Pegg, R.B. (2008, February). Antibacterial activity of tannin constituents from Phaseolus vulgaris, Fagoypyrum esculentum, Corylus avellana and Juglans nigra. Fitoterapia, 79(3), 217-219.
[35] Fiori, G.M.L.; Fachin, A.L.; Correa, V.S.C.; Bertoni, B.W.; Giuliatti, S.; Amui, S.F.; França, S.C., & Pereira, A.M.S. (2013, November). Antimicrobial activity and rates of tannins in Stryphnodendron adstringens Mart. accessions collected in the Brazilian Cerrado. American Journal of Political
Science, 4(11), 2193-2198.
[36] Joseph, N.; Mirelle, A.F.R.; Matchawe, C.; Patrice, D.N., & Josaphat, N. (2016, July-August). Evaluation of the antimicrobial activity of tannin extracted from the barks of Erythrophleum guineensis (Caesalpiniaceae). Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 5(4), 287-291.
[37] Wafa, N.; Sofiane, G., & Mouhamed, K. (2016, May-June). The antioxidant and antimicrobial activities of flavonoids and tannins extracted from Phlomis bovei De Noé. European Journal of Experimental Biology, 6(3), 55-61.
[2] Bosha, J.A.; Anaga, A.O., & Asuzu, I.U. (2015, January). Chemical composition of the marc of a wild tropical plant Tacca involucrata (Schumach and Thonn, 1827). Food and Nutrition Sciences, 6(1), 135-140.
[3] Caddick, L.R.; Rudall, P.J.; Wilkin, P.; Hedderson, T.A.J., & Chase, M.W. (2002, March). Phylogenetics of Dioscoreales based on combined analyses of morphological and molecular data. Botanical Journal of the Linnean Society, 138(2), 123-144.
[4] Jagtap, S., & Satpute, R. (2014, January). Phytochemical screening and antioxidant activity of tuber extracts of Tacca pinnatifida. International Journal of Recent Trends in Science and Technology, 9(3), 389-396.
[5] Ubwa, S.T.; Anhwange, B.A., & Chia, J.T. (2011, October). Chemical analysis of Tacca leontopetaloides peels. American Journal of Food Technology, 6(10), 932-938.
[6] Kelmanson, J. E.; Jäger, A.K., & van Staden, J. (2000, March). Zulu medicinal plants with antibacterial activity. Journal of Ethnopharmacology, 69(3), 241-246.
[7] Sonibare, M.A., & Abegunde, R.B. (2012, March). In vitro antimicrobial and antioxidant analysis of Dioscorea dumetorum (Kunth) Pax and Dioscorea hirtiflora (Linn.) and their bioactive metabolites from Nigeria. Journal of Applied Biosciences, 51, 3583-3590.
[8] Farombi, E.O.; Britton, G., & Emerole, G.O. (2000, July). Evaluation of the antioxidant and partial characterisation of extracts from browned yam flour diet. Food Research International, 33(6), 493-499.
[9] Ndouyang, C.J.; Njintang, N.Y.; Facho, B.; Scher, J., & Mbofung, C.M.F. (2015, January). Effect of processing method on the antinutrient content of Tacca leontopetaloides (L.) Kuntze flour. British Journal of Applied Science & Technology, 5(3), 258-269.
[10] Godghate, A.; Sawant, R., & Sutar, A. (2012). Phytochemical analysis of ethanolic extract of roots of Carrisa carandus Linn. Rasayan Journal of Chemistry, 5(4), 456-459.
[11] Sonam, M.; Singh, R.P., & Pooja, S. (2017). Phytochemical Screening and TLC Profiling of Various Extracts of Reinwardtia indica. International Journal of Pharmacognosy and Phytochemical Research, 9(4), 523-527.
[12] Yi, B.; Hu, L.; Mei, W.; Zhou, K.; Wang, H.; Luo, Y.; Wei, X., & Dai, H. (2011, December). Antioxidant phenolic compounds of cassava (Manihot esculenta) from Hainan. Molecules, 16(12), 10157-10167.
[13] Mailoa, M.N.; Mahendradatta, M.; Laga, A., & Djide, N. (2014, January). Antimicrobial activities of tannins extract from guava leaves (Psidium guajava L.) on pathogens microbial. International Journal of Scientific & Technology Research, 3(1), 236-241.
[14] Li, Y.; Ma, D.; Sun, D.; Wang, C.; Zhang, J.; Xie, Y., & Guo, T. (2015, August). Total phenolic, flavonoid content, and antioxidant activity of flour, noodles, and steamed bread made from different colored wheat grains by three milling methods. The Crop Journal, 3(4), 328-334.
[15] Habila, J.D.; Bello, I.A.; Dzikwe, A.A.; Ladan, Z., & Sabiu, M. (2011). Comparative evaluation of phytochemicals, antioxidant and antimicrobial activity of four medicinal plants native to Northern Nigeria. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 5(5), 537-543.
[16] Hans-Walter, H., & Piechulla, B. (2011). Plant Biochemistry. 4th ed. San Diego: Academic Press.
[17] Trugo, L.C.; von Baer, D., & von Baer, E. (2003). Encyclopedia of Food Sciences and Nutrition. 2nd ed. Oxford: Academic Press.
[18] Borokini, I., & Ayodele, A. (2012, January). Phytochemical screening of Tacca Leontopetaloides (L.) Kuntze collected from four geographical locations in Nigeria. Indian Journal of Medical Biochemistry, 2(4), 97-102.
[19] Jagtap, S., & Satpute, R. (2015). Phytochemical screening, antioxidant, antimicrobial and quantitative multi-elemental analysis of Peristylus densus (Lindl.) Santapau and Kapadia. Journal of Academia and Industrial Research, 3(10), 511-519.
[20] Soloway, S., & Wilen, S.H. (1952, June). Improved ferric chloride test for phenols. Analytical Chemistry, 24(6), 979-983.
[21] MacWilliam, I.C., & Wenn, R.V. (1972, July-August). Interpretation of colour tests for polyphenols and melanoidins. Journal of The Institute of Brewing, 78(4), 309-309.
[22] Cowan, M. (1999). Plant products as antimicrobial agents. Clinical Microbiology Reviews, 12, 564- 582.
[23] Maddox, C.E.; Laur, L.M., & Tian, L. (2010, January). Antibacterial activity of phenolic compounds against the phytopathogen Xylella fastidiosa. Current Microbiology, 60(1), 53-58.
[24] Vu, Q.T.H.; Le, P.T.K.; Vo, H.P.H.; Nguyen, T.T., & Nguyen, T.K.M. (2017, September). Characteristics of Tacca leontopetaloides L. Kuntze collected from an Giang in Vietnam. AIP Conference Proceedings. Retrieved January 9, 2019, from https://www.researchgate.net/publication/319865480_Characteristics_of_Tacca_leontopetaloides_L_Kuntze_collected_from_An_Giang_in_Vietnam
[25] Ogbonna, A.I.; Adepoju, S.O.; Ogbonna, C.I.C.; Yakubu, T.; Itelima, J.U., & Dajin, V.Y. (2017, January). Root tuber of Tacca leontopetaloides L. (kunze) for food and nutritional security. Microbiology: Current Research, 1(1), 5-11.
[26] Moreno, S.; Scheyer, T.; Romano, C.S., & Vojnov, A.A. (2006, February). Antioxidant and antimicrobial activities of rosemary extracts linked to their polyphenol composition. Free Radical Research, 40(2), 223-231.
[27] Cetin-Karaca, H. (2011). Evaluation of natural antimicrobial phenolic compounds against foodborne pathogens. Thesis, M.S. (College of Agriculture). Kentucky: Graduate school University of Kentucky.
[28] Wu, Y; Bai, J,: Zhong, K.; Huang, Y.; Qi, H.; Jiang, Y., & Gao, H. (2016). Antibacterial activity and membrane-disruptive mechanism of 3-p-trans-coumaroyl-2-hydroxyquinic acid, a novel phenolic compound from pine needles of cedrus deodara, against Staphylococcus aureus. Molecules, 21,
1-12.
[29] Latté, K.P., & Kolodziej, H. (2000). Antifungal effects of hydrolysable tannins and related compounds on dermatophytes, mould fungi and yeasts. Zeitschrift fur Naturforschung C, 55(5-6), 467-72.
[30] Teodoro, G.R.; Ellepola, K.; Seneviratne, C.J., & Koga-Ito, C.Y. (2015). Potential use of phenolic acids as anti-candida agents: a review. Frontiers in Microbiology, 6, 1-10.
[31] Poonia, S.; Singh, T.S., & Tsering, D.C. (2014, July). Antibiotic Susceptibility Profile of bacteria isolated from natural sources of water from rural areas of east Sikkim. Indian Journal of Community Medicine, 39(3), 156-160.
[32] Adeosun, O.M.; Arotupin, D.J.; Toba, O.A., & Adebayo, A.A. (2016, January-February). Antibacterial activities and phytochemical properties of extracts of Dioscorea bulbifera Linn (Air Potatoe) tubers and peels against some pathogenic bacteria. The Journal of Phytopharmacology, 5(1), 20-26.
[33] Akiyama, H.; Fujii, K.; Yamasaki, O.; Oono, T., & Iwatsuki, K. (2001, October). Antibacterial action of several tannins against Staphylococcus aureus. Journal of Antimicrobial Chemotherapy, 48(4), 487-491.
[34] Amarowicz, R.; Dykes, G.A., & Pegg, R.B. (2008, February). Antibacterial activity of tannin constituents from Phaseolus vulgaris, Fagoypyrum esculentum, Corylus avellana and Juglans nigra. Fitoterapia, 79(3), 217-219.
[35] Fiori, G.M.L.; Fachin, A.L.; Correa, V.S.C.; Bertoni, B.W.; Giuliatti, S.; Amui, S.F.; França, S.C., & Pereira, A.M.S. (2013, November). Antimicrobial activity and rates of tannins in Stryphnodendron adstringens Mart. accessions collected in the Brazilian Cerrado. American Journal of Political
Science, 4(11), 2193-2198.
[36] Joseph, N.; Mirelle, A.F.R.; Matchawe, C.; Patrice, D.N., & Josaphat, N. (2016, July-August). Evaluation of the antimicrobial activity of tannin extracted from the barks of Erythrophleum guineensis (Caesalpiniaceae). Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 5(4), 287-291.
[37] Wafa, N.; Sofiane, G., & Mouhamed, K. (2016, May-June). The antioxidant and antimicrobial activities of flavonoids and tannins extracted from Phlomis bovei De Noé. European Journal of Experimental Biology, 6(3), 55-61.
ดาวน์โหลด
เผยแพร่แล้ว
2021-01-13
รูปแบบการอ้างอิง
วัชรเทวินทร์กุล ญ. ., & เรียงหมู่ อ. . (2021). การตรวจหาสารพฤกษเคมีและฤทธิ์ต้านจุลินทรีย์ของสารสกัดเท้ายายม่อม (Tacca leontopetaloides (L.) Kuntze.) PHYSICOCHEMICAL AND ANTIMICROBIAL ACTIVITY OF THAO YAI MOM (TACCA LEONTOPETALOIDES (L.) KUNTZE.) EXTRACTS. วารสารมหาวิทยาลัยศรีนครินทรวิโรฒ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี, 12(24, July-December), 23–35. สืบค้น จาก https://ph02.tci-thaijo.org/index.php/swujournal/article/view/243093
ฉบับ
ประเภทบทความ
บทความวิจัย
สัญญาอนุญาต
วารสารมหาวิทยาลัยศรีนครินทรวิโรฒ สาขาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี อยู่ภายใต้การอนุญาต Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivs 4.0 International (CC-BY-NC-ND 4.0) เว้นแต่จะระบุไว้เป็นอย่างอื่น โปรดอ่านหน้านโยบายของวารสารสำหรับข้อมูลเพิ่มเติมเกี่ยวกับการเข้าถึงแบบเปิด ลิขสิทธิ์ และการอนุญาต
