Biodiversity of Lipid Producing-Bacteria Isolated from Palm Oil Industry in the South of Thailand
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
In this study, the phylogenetic diversity of lipid producing-bacteria isolated from samples collected from palm oil industry in the south of Thailand have been investigated. From 328 isolated bacteria, 56 strains were identified as potential lipid biomass producing-bacteria by using total lipids measurement. The amount of lipid yield and lipid content was ranging between 1.07-4.64 g/L and 13.30-48.59%, respectively. The identification of the selected bacterial strains was conducted by biochemical test and 16S rRNA gene sequence analysis. The study revealed that the selected bacterial strains were belonging to 20 different genera distributed among Actinobacteria, Bacteroidetes, Firmicutes and Proteobacteria division in Eubacteria and Archaea. Among the selection of isolated lipid-producing bacteria, 10 isolated bacteria were found to be prominent lipid-producers with Bacillus subtilis TN1 as the most potential isolate with lipid content 48.59% followed by Arthrobacter humicola TN2 (45.62%), Acinetobacter baylyi TP2 (40.78%), Bacillus subtilis TN5 (37.47%) and Streptomyces glebosus SN6 (35.78%).
Article Details
กองบรรณาธิการวารสารวิชาการ มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลกรุงเทพ มีความยินดีที่จะรับบทความจากอาจารย์ นักวิจัย นักวิชาการทั้งภายในและภายนอกมหาวิทยาลัย ในสาขาวิชาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี ได้แก่ สาขาวิชาวิทยาศาสตร์ วิศวกรรมศาสตร์ และสาขาอื่นๆ ที่เกี่ยวข้อง รวมถึงสาขาต่างๆ ที่มีการบูรณาการข้ามศาสตร์ที่เกี่ยวข้องวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี ที่เขียนเป็นภาษาไทยหรือภาษาอังกฤษ ซึ่งผลงานวิชาการที่ส่งมาขอตีพิมพ์ต้องไม่เคยเผยแพร่ในสิ่งพิมพ์อื่นใดมาก่อน และต้องไม่อยู่ในระหว่างการพิจารณาของวารสารอื่น
การละเมิดลิขสิทธิ์ถือเป็นความรับผิดชอบของผู้ส่งบทความโดยตรง บทความที่ได้รับการตีพิมพ์ต้องผ่านการพิจารณากลั่นกรองคุณภาพจากผู้ทรงคุณวุฒิและได้รับความเห็นชอบจากกองบรรณาธิการ
ข้อความที่ปรากฏอยู่ในแต่ละบทความที่ตีพิมพ์ในวารสารวิชาการเล่มนี้ เป็นความคิดเห็นส่วนตัวของผู้เขียนแต่ละท่าน ไม่เกี่ยวข้องกับมหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลกรุงเทพแต่อย่างใด ความรับผิดชอบด้านเนื้อหาและการตรวจร่างบทความแต่ละบทความเป็นของผู้เขียนแต่ละท่าน หากมีความผิดพลาดใดๆ ผู้เขียนแต่ละท่านจะต้องรับผิดชอบบทความของตนเองแต่ผู้เดียว
กองบรรณาธิการขอสงวนสิทธิ์มิให้นำเนื้อหา หรือข้อคิดเห็นใดๆ ของบทความในวารสารวิชาการ มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลกรุงเทพ ไปเผยแพร่ก่อนได้รับอนุญาตจากกองบรรณาธิการ อย่างเป็นลายลักษณ์อักษร ผลงานที่ได้รับการตีพิมพ์ถือเป็นลิขสิทธิ์ของวารสาร
References
[2] Qadeer S, Khalid A, Mahmood S, Anjum M. Utilizing oleaginous bacteria and fungi for cleaner energy production. J Clean Prod. 2017; 168:917-928.
[3] Wang B, Rezenom YH, Cho KC, Tran JL, Lee do G, Russell DH, et al. Cultivation of lipid-producing bacteria with lignocellulosic biomass: effects of inhibitory compounds of lignocellulosic hydrolysates. Bioresour Technol. 2014; 161:162-170.
[4] Liang MH, Jiang JG. Advancing oleaginous microorganisms to produce lipid via metabolic engineering technology. Prog Lipid Res. 2013; 52:395-408.
[5] Leiva-Candia DE, Pinzi S, Redel-Mac’ias MD, Koutinas A, Webb C, Dorado MP. The potential for agro-industrial waste utilization using oleaginous yeast for the production of biodiesel. Fuel. 2014; 123:33-42.
[6] Sitepu IR, Garay LA, Sestric R, Levin, D, Block DE, German JB, et al. Oleaginous yeasts for biodiesel: current and future trends in biology and production. Biotechnol Adv. 2014; 32:1336-1360.
[7] Meng X, Yang J, Cao Y, Li L, Jiang X, Xu X, Liu W, Xian M, Zhang Y. Increasing fatty acid production in E. coli by simulating the lipid accumulation of oleaginous microorganisms. J Ind Microbiol Biot. 2010; 38:919-925.
[8] Katayama T, Kanno M, Morita N, Hori T, Narihiro T, Mitani Y, et al. An oleaginous bacterium that intrinsically accumulates long-chain free fatty acids in its cytoplasm. Appl Environ Microb. 2014; 80:1126-1131.
[9] Li SL, Lin Q, Li XR, Xu H, Yang YX, Qiao DR, et al. Biodiversity of the oleaginous microorganisms in Tibetan Plateau. Braz J Microbiol. 2012;43:627-634.
[10] Saimmai A, Kaewrueng J, Maneerat S. Used lubricating oil degradation and biosurfactant production by SC-9 consortia obtained from oil contaminated soil. Ann Microbiol. 2012; 62:1757-1767.
[11] Vyas S, Chhabra M. Isolation, identification and characterization of Cystobasidium oligophagum JRC1: A cellulase and lipase producing oleaginous yeast. Bioresour Technol. 2017; 223:250-258.
[12] Zhang Q, Li Y, Xia L. An oleaginous endophyte Bacillus subtilis HB1310 isolated from thin-shelled walnut and its utilization of cotton stalk hydrolysate for lipid production. Biotechnol Biofuels. 2014; 7:152.
[13] Binazadeh M, Karimi IA, Li Z. Fast biodegradation of long chain n-alkanes and crude oil at high concentration with Rhodococcus sp. Moj-3449. Enzyme Microb Technol. 2009; 45:195-202.
[14] Folch JM, Lees M, Stanly HS. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J Biol Chem. 1956; 226:497-509.
[15] Saisa-ard K, Saimmai A, Maneerat S. Characterization and phylogenetic analysis of biosurfactant-producing bacteria isolated from palm oil contaminated soils. Songklanakarin J Sci Technology. 2014; 36:163-175.
[16] Saisa-ard K, Maneerat S, Saimmai A. Isolation and characterization of biosurfactants producing bacteria isolated from palm oil industry and evaluation for biosurfactants production using low-cost substrates. Biotechnol J Biotechnol Com Biol Bionanotechnol. 2013; 94:275-284.
[17] Bicca FC, Fleck LC, Ayub MAZ. Production of biosurfactant by hydrocarbon degrading Rhodococcus rubber and Rhodococcus erythropolis. Rev Microbiol. 1999; 30:231-236.
[18] Brennan L, Owende P. Biofuels from microalgae-a review of technologies for production, processing, and extractions of biofuels and co-products. Renew Sust Energ Rev. 2010; 14: 557-577.
[19] Mata TM, Martins AA, Caetano NS. Microalgae for biodiesel production and other applications: a review. Renew Sust Energ Rev. 2010; 14: 217-232.
[20] Gagelidze NA, Amiranashvili LL, Sadunishvili TA, Kvesitadze GI, Urushadze TF, Kvrivishvili TO. Bacterial composition of different types of soils of Georgia. Ann Agrarian Sci. 2018; 16:17-21.
[21] Hrenovic J, Durn G, Goic-Barisic I, Kovacicd A. Occurrence of an Environmental Acinetobacter baumannii strain similar to a clinical isolate in paleosol from Croatia. Appl Environ Microbiol. 2014;80:2860-2866.
[22] Kosa M, Ragauskas AJ. Lipids from heterotrophic microbes: advances in metabolism research. Trend Biotechnol. 2011; 29:53-61.
[23] Ruggeri C, Franzetti A, Bestetti G, Caredda P, La Colla P, Pintus M, et al. Isolation and characterisation of surface active compound-producing bacteria from hydrocarbon-contaminated environments. Int Biodeter Biodegr. 2009; 63:936-942.
[24] Sriwongchai S, Pokethitiyook P, Pugkaew W, Kruatrachue M, Lee H. Optimization of lipid production in the oleaginous bacterium Rhodococcus erythropolis growing on glycerol as the sole carbon source. Afr J Biotechnol. 2012; 11:14440-14447.
[25] Alvarez HM, Steinbchel A. Triacylglycerols in prokaryotic microorganisms. Appl Microbiol Biotechnol. 2002; 60:367-376.
[26] Noparat P, Maneerat S, Saimmai A. Utilization of palm oil decanter cake as a novel substrate for biosurfactant production from a new and promising strain of Ochrobactrum anthropi 2/3. World J Microb Biot. 2014; 30:865-877.
[27] Tuleva B, Christova N, Cohen R, Antonova D, Todorov T, Stoineva I. Isolation and characterization of trehalose tetraester biosurfactant from a soil strain Micrococcus luteus BN56. Process Biochem. 2009; 44:135-141.
[28] Bramhachari PV, Dubey SK. Isolation and characterization of exopolysaccharide produced by Vibrio harveyi strain VB23. Lett Appl Microbiol. 2006; 43:571-577.
[29] Bramhachari PV, Kishor PBK, Ramadevi R, Kumar RB, Rao R, Dubey SK. Isolation and characterization of mucous exopolysaccharide (EPS) produced by Vibrio furnissii strain VB0S3. J Microbiol Biotechnol. 2007; 17:44-51.
[30] Kavita K, Mishra A, Jha B. Extracellular polymeric substances from two biofilm forming Vibrio species: characterization and applications. Carbohydr Polym. 2013; 94:882-888.