Screening and partial purification of antibacterial compounds from Streptomyces sp. strain RS2
Article Sidebar
Main Article Content
บทคัดย่อ
Streptomyces sp. RS2 was isolated from soil samples in Dong Pong village, KhonKaen province, Thailand. The active strain RS2 was identified as genus Streptomyces, and it was related to S. gelaticus NRRL B-2928T at 99.43% 16S rDNA similarity. It was screened for antifungal and antibacterial activities by dual culture and cross streak methods, respectively. The results showed that Streptomyces sp. RS2 exhibited anti-microbial activity against fungal and gram-positive and gram-negative bacteria. Therefore, it was cultured on ISP2 medium at 30°C for 7 days. After incubation, the culture medium was dried, and the mashed biomass was extracted with organic solvents as methanol (MeOH). The crude MeOH extract was purified by using a high performance liquid chromatography (HPLC) with diode-array detector (DAD). Additionally, the partial purified fractions were tested for antibacterial activity by agar well diffusion method. The results showed that 5 fractions showed antibacterial activity against S. aureus ATCC 25923, Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 and Escherichia coli ATCC 25922. The fraction number 3 and 4 exhibited the highest antibacterial activity, these fractions will be interested to purify and study in the function of the active compounds in the future.
Article Details
กองบรรณาธิการวารสารวิชาการ มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลกรุงเทพ มีความยินดีที่จะรับบทความจากอาจารย์ นักวิจัย นักวิชาการทั้งภายในและภายนอกมหาวิทยาลัย ในสาขาวิชาวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี ได้แก่ สาขาวิชาวิทยาศาสตร์ วิศวกรรมศาสตร์ และสาขาอื่นๆ ที่เกี่ยวข้อง รวมถึงสาขาต่างๆ ที่มีการบูรณาการข้ามศาสตร์ที่เกี่ยวข้องวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยี ที่เขียนเป็นภาษาไทยหรือภาษาอังกฤษ ซึ่งผลงานวิชาการที่ส่งมาขอตีพิมพ์ต้องไม่เคยเผยแพร่ในสิ่งพิมพ์อื่นใดมาก่อน และต้องไม่อยู่ในระหว่างการพิจารณาของวารสารอื่น
การละเมิดลิขสิทธิ์ถือเป็นความรับผิดชอบของผู้ส่งบทความโดยตรง บทความที่ได้รับการตีพิมพ์ต้องผ่านการพิจารณากลั่นกรองคุณภาพจากผู้ทรงคุณวุฒิและได้รับความเห็นชอบจากกองบรรณาธิการ
ข้อความที่ปรากฏอยู่ในแต่ละบทความที่ตีพิมพ์ในวารสารวิชาการเล่มนี้ เป็นความคิดเห็นส่วนตัวของผู้เขียนแต่ละท่าน ไม่เกี่ยวข้องกับมหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลกรุงเทพแต่อย่างใด ความรับผิดชอบด้านเนื้อหาและการตรวจร่างบทความแต่ละบทความเป็นของผู้เขียนแต่ละท่าน หากมีความผิดพลาดใดๆ ผู้เขียนแต่ละท่านจะต้องรับผิดชอบบทความของตนเองแต่ผู้เดียว
กองบรรณาธิการขอสงวนสิทธิ์มิให้นำเนื้อหา หรือข้อคิดเห็นใดๆ ของบทความในวารสารวิชาการ มหาวิทยาลัยเทคโนโลยีราชมงคลกรุงเทพ ไปเผยแพร่ก่อนได้รับอนุญาตจากกองบรรณาธิการ อย่างเป็นลายลักษณ์อักษร ผลงานที่ได้รับการตีพิมพ์ถือเป็นลิขสิทธิ์ของวารสาร
References
[2] Sharma D, Mayilraj S, Manhas R. Streptomyces amritsarensis sp. nov., exhibiting broad-spectrum anti- microbial activity. Antonie van Leeuwenhoek. 2014; 105(5):943-9.
[3] Jose PA, Jebakumar SRD. Phylogenetic diversity of actinomycetes cultured from coastal multipond solar saltern in Tuticorin, India. Aquat Biosystems. 2012; 8(23):1-9.
[4] Yang SS, Ling MY. Tetracycline production with sweet potato residue by solid state fermentation. Int J Biotechnol Bioeng Res. 1989; 33(8):102-8.
[5] Pandey A, Ali I, Butola KS, et al. Isolation and characterization of acti- nomycetes from soil and evaluation of antibacterial activities of acti-nomycetes against pathogens. Int J Appl Biol Pharmaceut Tech. 2011; 2(4):384-92.
[6] Atta HM, El-Sayed AS, El-Desoukey MA, et al. Biochemical studies on the Natamycin antibiotic produced by Streptomyces lydicus: Fermentation, extraction and biological activities. J Saudi Chem Soc. 2015; 19(4):360-71.
[7] Nonpanya N, Niamsanit S. Efficiency of Streptomyces sp. RS2 against various phyto-pathogenic fungi and human pathogenic bacteria 6th Annual International Conference on Advances in Biotechnology (BIOTECH 2016); 2016 Mar 28-29; Singapore. 2016. P. 19–23.
[8] Mangamuri UK, Muvva V, Poda S, et al. Isolation, identification and molecular characterization of rare acti- nomycetes from mangrove eco- system of Nizampatnam. Malaysian J Microbiol. 2012; 8(2):83-91.
[9] Kumar V, Negi YK, Gusain O, et al. Screening of Actinomycetes from earthworm castings for their antimicrobial activity and industrial enzymes. Braz J Microbiol. 2012; 43(1):205-14.
[10] Rajan BM, Kannabiran K. Extraction and identification of antibacterial secondary metabolites from marine Streptomyces sp. VITBRK2. Int J Mol Cell Med. 2014; 3(3):130-7.
[11] Uchida R, Hanaki H, Matsui H, et al. In vitro and in vivo anti-MRSA activities of nosoko- mycins. Drug Discoveries and Therapeutics. 2014; 8(6):249-54.
[12] Balouiri M, Sadiki M, Ibnsouda SK. Methods for in vitro evaluating antimicrobial activity: A review. Res Rev J Pharmaceut Anal. 2016; 6(2):71-9.
[13] Bizuye A, Moges F, Andualem B. Isolation and screening of antibiotic producing Actinomycetes from soils in Gondar town, North West Ethiopia. Asian Pac J Trop Disease. 2013; 3(5):375-81.
[14] Nguyen TM, Kim J. Streptomyces olivicoloratus sp. nov., an antibiotic-producing bacterium isolated from soil. Int J Syst Evol Microbiol. 2015; 65:3262-70.
[15] Tamreihao K, Nimaichand S, Chanu SB, et al. Acidotolerant Streptomyces sp. MBRL 10 from limestone quarry site showing antagonism against fungal pathogens and growth promotion in rice plants. J King Saud Univ Sci.2018; 30(2):143-52.
[16] Euch-El IZ, Frese M, Sewald N, et al. Bioactive secondary metabolites from new terrestrial Streptomyces sp TN82 strain: Isolation, structure elucidation and biological activity. Med Chem Res. 2018; 27(4):1085-92.
[17] He F, Yang Y, Yang G, et al. Studies on antibacterial activity and antibacterial mechanism of a novel polysaccharide from Streptomyces virginia H03. Food Contr. 2010; 21(9):1257-62.